WWW.BOOK.LIB-I.RU
БЕСПЛАТНАЯ  ИНТЕРНЕТ  БИБЛИОТЕКА - Электронные ресурсы
 
s

Pages:     | 1 ||

«МЕТОДИКА КОМПЛЕКСНОГО ГИДРОХИМИЧЕСКОГО И БИОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ КАЧЕСТВА ВОД И СОСТОЯНИЯ ВОДНЫХ И ОКОЛОВОДНЫХ ЭКОСИСТЕМ: МЕТОДИЧЕСКОЕ ...»

-- [ Страница 2 ] --

Образцы фитомассы, высушенные до воздушно-сухого состояния, взвешиваются отдельно по видам для каждой учетной площадки.

Полученные результаты заносятся в соответствующие графы паспорта пробной площади.

Обработка материала по каждой постоянной пробной площади (ППП) предусматривает определение ряда статистических показателей.

Для древостоя это:

- средний диаметр насаждения,

- средняя высота насаждения,

- средний возраст (определяется по главной породе),

- бонитет (определяется по средним высоте и возрасту деревьев с помощью специальных таблиц),

- запас древесины в пересчете на 1 га (определяется через средний диаметр деревьев с помощью сортиментных таблиц),

- состав насаждения (отражает % участия каждой породы в общем запасе древостоя),

- полнота насаждения,

- сомкнутость крон,

- средний балл жизненного состояния,

- среднее количество подроста в пересчете на 1 га.

А для травяно-кустарничковой и мохово-лишайниковой растительности это:

- количество видов: сумма видов растений (S), отмеченных на ППП.

- сумма площадей проективных покрытий всех видов сообщества (N),

- относительное обилие каждого вида в сообществе: площадь проективного покрытия (ni) вида/N,

- индекс доминирования: С = (проект.покр. ni вида/N)2

- индекс видового разнообразия: 1 - С,

- индекс выровненности: Е = Pi lg Рi/lg S, где Pi - доля каждого вида (ni/N),

- процент синантропизации: ni синантропных видов/ N,

- процент чувствительных видов: ni чувствит. видов/N,

- запас фитомассы живого напочвенного покрова (ЖНП): суммарная величина биомассы всех видов растительного сообщества M,

- коэффициент участия вида в общем запасе фитомассы ЖНП: биомасса от дельного вида (mi)/M, Для всей территории подсчитываются средние значения по всем показателям (из всех ППП), их статистические ошибки, коэффициенты вариации (Лакин,1990). Для статистической обработки материалов может быть использован пакет программ "STATAN-1996".

Точность исследований определяется тщательностью проведения полевого сбора материала.

Результаты исследований, форма их предоставления, отчетные материалы.

Результаты исследований представляют собой комплекс обработанных статистически показателей, занесенных в специальные формы (Форма 20), содержащие сведения по каждому РУЭМ сети регионального экологического мониторинга.

Часть информации предоставляется в описательной форме (пространственная структура фитоценоза:

наличие ярусов синузий, соотношение различных экологических групп растений;

жизненность отдельных видов растений, особенности прохождения ими различных фенологических фаз и т.д.). Указанные формы представляются как в натуральном виде (на бумаге), так и в виде электронных таблиц или баз данных.

Форма 20.

Характеристика фитоценоза.... ППП

Место расположения (географическая привязка):

Биогеоценоз:

Антропогенные факторы (если есть):

Дата исследования:

Исследователь:

Шифр Показатель Примечание Среднееошибка Коэф.вариации ошибка

2.3. Наземные животные

2.3.1. Млекопитающие Видовое сообщество мелких млекопитающих включает в себя представителей н/типа Хордовых (Сhordata), типа Позвоночных (Vertebrata) класса Млекопитающих (Mammalia), относящихся к трем отрядам: Насекомоядных (Insectivora), Грызунов (Rodentia) и Хищных (Carnivora) (Каталог..., 1981).





В экосистемах занимают нишу консументов первого, второго и третьего порядка (Наумов, 1955; Одум, 1986).

Видовое сообщество мелких млекопитающих состоит из совокупности популяций различных видов зверей в пределах единой территории, характеризующейся комплексом биотических и абиотических условий, в градиенте которых популяции разных видов млекопитающих распределены специфическим образом (агрегированность выражена в разной степени) и находятся в динамическом равновесии между собой, с биоценозом и абиотическими условиями среды. Ряд видов (кутора, водяная полевка, ондатра, колонок и ряд других) связаны непосредственно с водной средой обитания. Для проведения экологотоксикологических исследований рекомендуются обыкновенная или тундряная бурозубки из отряда Насекомоядные и водяная, красная и рыжая полевки из отряда Грызуны.

В пределах исследуемой территории встречаются повсеместно, но наиболее богаты и многочисленны в местах обитания с сильной захламленностью, наличием 100% проективного покрова травянистыми растениями и высоким обилием почвенных беспозвоночных. Состав видов, их соотношение и обилие особей в сообществе мелких млекопитающих подвержены естественной пространственной и временной (в различные сезоны года и разные года) изменчивости. Изменение структуры и состава сообщества мелких млекопитающих по сравнению с фоновым состоянием свидетельствует о неспецифических изменениях в среде их обитания.

Оборудование и материалы:

- капканы Геро (130х60 мм) с подвижным поликом (Рис. 9) - 50 шт.,

- метки из яркого материала (красные тряпочки 20х200 мм) - 50 шт.,

- мешочки шламовые,

- пинцет,

- ножницы,

- журнал регистрационный,

- карандаши простые,

- линейка канцелярская (угольник),

- банка под черепа с плотными крышками (по 0,5 л),

- банка под приманку (0,02 л.),

- весы аптечные с разновесом (1 компл.),

- иголки канцелярские (1 упаковка),

- пенопласт (20х40 см),

- штангенциркуль

Для камеральных работ необходимы:

- лупы (х5, х10),

- иглы препарировальные,

- пинцет 10-15 см,

- ванночка лабораторная,

- ложечка для чистки мозговой коробки.

- спирт этиловый 80% (1,5 л),

- нитки (1 катушка),

- бинт (2 упаковки),

- тушь черная (1 шт.),

- масло растительное (20 мл),

- хлеб (0,5 булки),

- соль поваренная (200 г).

Рис. 9. Капкан Геро.

Методика работ. Отловы мелких млекопитающих на пробных площадях проводятся, как правило, в бесснежный период года (лучше в конце лета, в начале осени: август-сентябрь) линиями ловушек-давилок и канавками с конусами или цилиндрами (Коренберг, Кучерук, 1964; Новиков, 1949; Юргенсон, 1937; Гашев, 1995 и др.).

Второй метод более трудоемкий, поэтому для массовых работ нами и другими авторами (Система мониторинговых наблюдений…, 2005 и др.) рекомендуется первый. Он заключается в применении капканов Геро, выставляемых линиями по 50 штук через 4-5 метров друг от друга с приманкой из хлебной корки, пропитанной нерафинированным подсолнечным маслом в течение определенного времени. Продолжительность каждого цикла отловов должна быть достаточной, чтобы нивелировать изменчивость в подвижности, обусловленную изменениями погодных условий, видовым и половозрастным составом сообщества мелких млекопитающих. Обычно для проведения достаточно 4-5 дней (экспресс методика предполагает 2-х суточные отловы). Однако в случае очень высокой численности животных (попадаемость более 20 экземпляров одного вида на 100 ловушко-суток для большинства лесных местообитаний на территории региона (Система мониторинговых наблюдений…, 2005)) срок проведения отловов следует увеличить до начала снижения количества ежедневно отлавливаемых животных (до 6-10 дней). Проверка ловушек и сбор пойманных зверьков производится один раз в сутки в утренние часы, при этом съеденная или размокшая приманка заменяется на новую. Линия давилок условно делится на 5 участков (по 10 ловушек) и при проверке линии отмечается количество пойманных зверьков на каждом из ее участков для последующего расчета дисперсии. Все отловленные животные в тот же день подвергаются первичной обработке по общепринятым методикам (Млекопитающие…, 2000).

Определяется вид, пол и возраст каждого пойманного животного. При этом с каждого зверька снимаются такие показатели как масса тела (г), длина тела, длина хвоста, длина задней ступни, длина уха (все в мм). При вскрытии определяется масса тимуса, сердца, легких, печени, селезенки, почек, надпочечников, семенников или яичников (все с точностью до 1 мг), оценивается состояние генеративной системы и участие зверька в размножении (для самок указывается наличие и число плацентарных пятен или эмбрионов в каждом роге матки, число резорбирующих эмбрионов). Отдельно отмечаются имеющиеся морфологические аномалии животных (необычная окраска зверьков, травмы, уродства, случаи некроза или опухолей органов и тканей, гипертрофию органов и т.д.).

Все эти данные по каждому животному заносятся в полевой журнал. Черепа и шкурки зверьков помещаются в коллекцию для последующей обработки.

Для более полного определения видового состава мелких насекомоядных и некоторых грызунов дополнительно могут проводиться отловы зверьков канавками глубиной и шириной в штык саперной лопатки длиной 50 м с конусами или цилиндрами, вкопанными через 5 м (в зависимости от целей отловов - с формалином или без).

Канавку с успехом может заменить заборчик, сделанный из полиэтиленовой пленки.

Относительные данные уловов пересчитываются на 100 ловушко-, цилиндро- (или конусо-) суток. Таким образом, данные отловов капканами, канавками и заборчиками позволяют оценить относительную численность микромаммалий, хотя существуют пересчетные коэффициенты, которые позволяют перевести относительные показатели учета в абсолютные.

Количество учетных площадей зависит от представленности различных типов биогеоценозов на исследуемой территории. На учетных площадях и в районе работ изучаются основные характеристики сообществ мелких млекопитающих, а также численность, видовой состав, половая, возрастная структура популяций доминирующих видов мелких млекопитающих и их репродуктивные особенности. Для определения видовой принадлежности животных используются определители Б.А.Кузнецова (1975);

Б.С.Виноградова, И.М.Громова (1984), монографии А.А.Гуреева (1979), Б.С.Юдина (1989) и другие работы (Гашев, 1986; Фауна СССР…, 1979).

Чрезвычайно важным является ведение полевого журнала. В него нужно занести следующие данные по каждой особи: номер пробы, вид животного, пол, возраст, место отлова, данные взвешивания и внешних измерений, другие данные, важные, например, для определения видовой принадлежности и др. (Форма 21).

Форма 21.

Форма полевого журнала при исследовании мелких млекопитающих Параметры №.... №..... №..... №.....

Вид Пол Возраст Место добычи Дата добычи Масса тела Длина тела Длина хвоста Длина ступни (правая/левая) Длина уха (правая/левая) Масса сердца Масса печени Масса почки (правая/левая) Масса надпочечника (правая/левая) Масса тимуса Масса селезенки Масса легких Размер, вес семенника (яичника) (правая/левая) Длина, диаметр рога матки (правая/левая) Количество и размер эмбрионов (в каждом роге матке) Состояние молочных желез Количество гемоглобина в крови Линька Наличие экто- и эндопаразитов Для коллекции берутся черепа и шкурки отловленных зверьков. Отдельно фиксируются паразиты.

–  –  –

24 длина лицевого отдела черепа 25 скуловая ширина 26 ширина межглазничного промежутка 27 затылочная ширина 28 длина нижней челюсти 29 высота нижней челюсти Гематологический анализ проводят на только что добытых животных. Определяется концентрация гемоглобина с помощью гемометра Сали или электронного гемометра (кровь берется из сердца) и делается мазок крови, который подсушивают и фиксируют спиртом.

Для анализа морфофизиологических особенностей популяций мелких млекопитающих импактных территорий используется метод, предложенный С.С.Шварцем, В.С.Смирновым и Л.Н.Добринским (1968), дополненный некоторыми современными подходами (Гашев, 2000).

Гистологический анализ. После макроскопического описания и вскрытия проводится препарирование органов для последующего гистологического анализа по методике, описанной выше (см. Раздел «Рыбы»). Для анализа отбираются образцы печени и почек.

Методика сбора материала для генетических исследований.

Для сбора образцов для генетических исследований в полевых условиях необходимо следующие материалы и инструменты:

- коробка с пробирками Эппендорфа объемом 1.5 – 2 мл, заполненными на 2/3 чистым 96 % этанолом;

- маркер для нумерации пробирок;

- набор чистых инструментов: скальпель, пинцет, ножницы, препаровальные иглы;

- чистые салфетки и посуда для разделки тушек животных;

- переносной холодильник;

- полевой журнал.

Для выделения ДНК у позвоночных животных пригодны фактически любые ткани, но преимущество имеют внутренние органы: сердце, печень, селезенка, скелетные мышцы.

Недостаток первых трех органов заключается в том, что они достаточно быстро разлагаются у погибших животных. ДНК в печени быстро деградирует из-за высокой ферментативной активности. Поэтому у несвежих тушек следует брать мышечную ткань, лучше сухую, но не протухшую. У грызунов берут также хвост и ступню, их фиксируют отдельно от внутренних органов, так как они могут содержать чужеродную ДНК вследствие загрязнения. У свежих тушек лучше брать сердце.

Техника взятия пробы: сердце целиком (у мелких животных) или кусочек органа (у крупных животных) массой около 100-500 мг чистыми инструментами, избегая контакта с поверхностями, поместить в пробирку Эппендорфа, в которую предварительно налит этанол. Для каждого экземпляра нужно брать чистый инструмент или мыть и протирать этанолом уже использованный. Пробирку нужно промаркировать дважды – на крышке и боковой поверхности. Маркер не должен смываться водой или спиртом. Через день нужно сменить фиксатор – залить чистый 96 % этанол.

Хранение и транспортировка материала. Собранный материал нужно хранить в темном месте, желательно в холодильнике при температуре - 20°С, но если условия не позволяют, то до доставки в лабораторию можно хранить в переносном холодильнике при +4°С.

Необходимое количество образцов для популяционного анализа – от 10 до 50 особей на каждую локальную выборку.

Для определения накопления в организме тяжелых металлов снятая шкурка животного (Медведев, 2004) после высушивания вместе с бумажной этикеткой с номером зверька по полевому журналу помещается в пластиковый пакет, где хранится до анализа в лабораторных условиях.

2.3.2. Птицы Видовое сообщество птиц включает в себя представителей н/типа Хордовых (Сhordata), типа Позвоночных (Vertebrata) класса Птиц (Aves), относящихся к 20 отрядам (Крапивный и др., 1982; Кузнецов, 1974). В экосистемах занимают ниши консументов разных порядков (растительноядные, насекомоядные и плотоядные виды) (Одум, 1986).

Видовое сообщество птиц состоит из совокупности популяций различных видов в пределах единой территории, характеризующейся комплексом биотических и абиотических условий, в градиенте которых популяции разных видов птиц распределены специфическим образом (агрегированность выражена в разной степени) и находятся в динамическом равновесии между собой, с биоценозом и абиотическими условиями среды.

Для начала размножения необходима определенная длина светового дня. В пределах исследуемой территории встречаются повсеместно, но наиболее богаты и многочисленны в лесах разных типов и в пойменных околоводных биотопах.

Оборудование и материалы:

- журнал регистрационный,

- карандаши простые,

- линейка канцелярская (угольник),

- бинокль полевой,

- магнитофон кассетный портативный с остронаправленным микрофоном,

- кассеты магнитофонные – 5 шт.,

- батарейки (1.5 V) (6 шт.).

- штангенциркуль,

- весы аптечные с разновесом (1 комплект) Методы работы. В настоящее время в большинстве стран мира применяются следующие три основные группы методик количественного учета птиц: 1) методики картографирования территорий (площадочные учеты), 2) методики линейных трансектов (маршрутные учеты), 3) методики точечных учетов (точечные учеты). Эти три группы методик одобрены Международным комитетом по учетам птиц и для них выработаны международные стандарты. Нами рекомендуются только две последних.

Маршрутный метод - для получения силами ограниченного числа наблюдателей данных об относительных плотностях населения птиц в разных биотопах при их небольшой мозаичности, метод точечных учетов - для слежения за изменениями численности разных (модельных) видов, в том числе силами орнитологов-любителей, а также для исследований в очень мозаичном ландшафте.

Летние учеты птиц в целях экологического мониторинга в послегнездовой период проводятся на постоянных, но не строго фиксированных маршрутах. В ходе учетов регистрируются все птицы, независимо от расстояния до них, с последующим пересчетом на площадь интервальным методом (Равкин, 1967). Непосредственно на учетных линиях и при обработке результатов все отмеченные птицы разделяются по дальности их фактического обнаружения на три основные группы: 1) птицы, обнаруженные близко (до 25 м от учетчика); 2) обнаруженные недалеко (26-100 м); 3) обнаруженные далеко (101 до 300 и более метров). Расстояния определяются глазомерно и приблизительно, возможные ошибки в отнесении части птиц не в те группы компенсируются массовостью материала.

Для птиц, встреченных летящими, вносится поправка на скорость перемещения (Равкин, Доброхотов, 1963). Видовая идентификация птиц проводится по полевым определителям и другим пособиям (Иванов, 1976; Штегман, 1938). Чтобы избежать занижения показателя абсолютного обилия птиц на определенной площади (плотности населения птиц) со значительной разницей в дальности обнаружения отдельных особей следует раздельно пересчитывать на площадь число птиц каждой группы. Для упрощения подсчета вводят постоянные множители, которые показывают, во сколько раз нужно увеличить число особей, встреченных на 1 км маршрута, чтобы вычислить количество их на 1 кв.км.

Постоянный множитель равен: для особей, обнаруживаемых близко - 40; для замеченных недалеко - 10; для отмеченных далеко - 3.

Для практических расчетов рекомендуется пользоваться формулой:

К= (40б + 10н + 3д)/ р, где К - количество особей на 1 кв.км;

б - число птиц, отмеченных близко;

н - число птиц, отмеченных недалеко;

д - число птиц, отмеченных далеко;

р - длинна учетного маршрута в км.

Видовой состав птиц и их плотность в разных типах ландшафтов или биогеоценозов учитываются раздельно. При ведении целенаправленных мониторинговых исследований маршрут должен быть постоянным и обследоваться в течение нескольких лет, по возможности, одним и тем же наблюдателем. Если обследование проводит другой наблюдатель, то результаты следует воспринимать, как с другого маршрута или местности. При необходимости сравнения данных, полученных двумя наблюдателями, для установления индивидуальных различий в способности учитывать птиц необходимо проведение специального учета этими учетчиками одновременно, но независимо друг от друга.

Ряд птиц (отряды Гусеобразные, Ржанкообразные и некоторые виды других отрядов) связаны непосредственно с водной средой обитания. Для проведения экологотоксикологических исследований рекомендуются представители речных и нырковых уток, речная или полярная крачки, серебристая, сизая или озерная чайки.

Гематологический анализ проводят на только что добытых птиц. Определяется концентрация гемоглобина с помощью гемометра Сали или электронного гемометра (кровь берется из сердца) и делается мазок крови, который подсушивают и фиксируют спиртом.

Для анализа морфофизиологических особенностей популяций птиц импактных территорий используется метод, предложенный С.С.Шварцем, В.С.Смирновым и Л.Н.Добринским (1968) (см. Раздел «Млекопитающие»). Данные измеренных в поле параметров заносятся в полевой журнал (Форма 23).

Форма 23.

Форма полевого журнала при исследовании птиц Параметры №.... №..... №..... №.....

Вид Пол Возраст Место добычи Дата добычи Масса тела Длина тела Длина хвоста Длина крыла (правая/левая) Длина клюва Масса сердца Масса печени Масса легких (правая/левая) Размер, масса яичника Количество гемоглобина в крови Линька Наличие экто- и эндопаразитов Гистологический анализ. После макроскопического описания и вскрытия проводится препарирование органов для последующего гистологического анализа по методике, описанной выше (см. Раздел «Рыбы»). Для анализа отбираются образцы печени.

–  –  –

Для определения накопления в организме тяжелых металлов 10 перьев (5 маховых и 5 рулевых) (Добровольская, 2004) вместе с бумажной этикеткой с номером птицы по полевому журналу помещаются в пластиковый пакет, где хранится до анализа в лабораторных условиях.

2.3.3. Наземные беспозвоночные.

Видовое сообщество наземных беспозвоночных в значительной мере включает в себя представителей различных отрядов насекомых, однако могут быть обнаружены представители иных таксономических групп членистоногих и другие беспозвоночные.

Оборудование и материалы:

- сачок энтомологический,

- морилка (0.25 л),

- ватман (А3) (2 листа) для матрасиков,

- вата для матрасиков (300 гр.),

- калька для конвертиков (2 кв. м),

- тара (коробка) для матрасиков и конвертиков,

- пинцет,

- ножницы,

- журнал полевой,

- карандаши простые,

- этилацетат (100 г)

Для камеральных работ необходимо иметь:

- бинокулярный микроскоп МБС,

- препаровальные иглы,

- расправилку для насекомых,

- энтомологические коробки.

Определение видового состава и численности насекомых осуществляется методом кошения сачком (Райков, Римский-Корсаков, 1994). Сачок берут в правую руку и, подвигаясь медленным шагом, шаркают им сильными взмахами по траве и мелким кустарникам, как будто косят. Ударять надо справа налево, держа обод сачка наклонно, под острым углом к стеблям растений. При кошении надо следить, чтобы тень человека не падала на то место, где он собирается снимать улов. Сделав 10-15 взмахов, нужно остановиться, быстро перехватить мешок сачка левой рукой и зажать материю так, чтобы попавшиеся насекомые не могли выбраться из сачка. Затем берут широкогорлую банку, заправленную этилацетатом (морилку) и пересыпают туда насекомых. Пойманные насекомые пересчитываются по числу особей или биомассе на обкошенную площадь.

Оптимальным временем для кошения являются солнечные безветренные дни.

Кроме того, для выяснения максимального видового состава используется визуальный отлов насекомых – ручной сбор (на растениях, под поваленными деревьями, с трупов животных и др.) или ловля сачком на учетных маршрутах по изучению других групп наземных животных.

Из морилки пойманные животные помещаются на ватные матрасики или в бумажные конвертики (бабочки), которые упаковываются в коробку и транспортируются для камеральной обработки в лабораторию, где проводится их систематическое определение, подсчет, производится статистическая обработка данных.

2.3.4. Почвенные и амфибиотические беспозвоночные:

Оборудование и материалы:

- бур почвенный;

- морилка (0,25 л.);

- пакеты полиэтиленовые;

- калька;

- ножницы;

- карандаши простые;

- пробирки (пенициллинки);

- спирт этиловый (1 л.);

- журнал полевой;

- клеенка белая;

- лопата штыковая;

- линейка измерительная (до 25 см).

Сбор мезофауны (беспозвоночные размером свыше 1-2 мм) и фауны микроартропод (0,1-1 мм) несколько различаются. Сбор и фикасация мезофауны – трудоемкий процесс, проводится в полевых условиях. Мезофауна в каждом биотопе отбирается с учетных площадок размером 25х25 см (Методы…, 1975). Всего случайным образом выбирают 10площадок. Подстилка и почва вынимаются послойно и переносятся на белую клеенку, где происходит разбор почвенной пробы вручную. Обнаруженные беспозвоночные переносятся в морилки (имаго насекомых) или пробирки с фиксирующей жидкостью (как правило, этиловый спирт 70%).

Полевой этап количественного сбора микроартропод занимает непродолжительное время.

Для сбора микроартропод в каждом биотопе отбирают 15 стандартных проб площадью 5х5 см (глубина до 20 см, в случае изучения вертикального распределения беспозвоночных – послойно по 5 см) с помощью почвенного бура, металлической рамки либо острым ножом по очерченному с помощью линейки контуру. Пробы почвы помещают в полиэтиленовые пакеты, этикетируют, завязывают и переносят в прохладное место, можно в нижнее отделение холодильника, для последующей доставки в лабораторию, где выгонка членистоногих происходит с помощью термоэклектора Берлезе (воронок Берлезе).

Глава 3. Болотные экосистемы

Толщи торфяных отложений в силу слоистого строения, по сути представляют собой природные летописи голоцена, позволяющие реконструировать природные условия прошлого и тенденции развития водных и наземных экосистем. Необходимую информацию обычно получают путем послойного изучения различных свойств, слоев торфяных залежей во времени, т. е. смены одних видов торфа другими. Для решения большого числа палеогеографических и палеоэкологических задач обычно изучают степень разложения и зольность торфа, мощность и состав отложений, ботанический анализ торфа, изучение погребенных макроостатков древесины, плодов и семян растений, пыльцы и спор и т.д. Современные исследования болотных экосистем, как правило, требуют обязательного использования методов абсолютной геохронологии для датирования разрезов и хронологической привязки стратиграфических горизонтов, из которых наиболее разработанным является радиоуглеродный метод (14С). Многие исследователи отмечали, что торфяные отложения часто подстилаются толщами сапропеля (гиттии), различного минералогического состава, содержащими остатки семенных и споровых растений, водных и болотных беспозвоночных животных. В торфяниках в виде включений встречаются остатки деревьев и позвоночных животных, не связанных в своей жизни с болотами, а также стоянки древнего человека.

Оборудование и материалы (в расчете на 1 отряд):

-комплект ручных пробоотборников для гетерогенных почв- 1

- торфяной бур -1

-бур почвенный -1

-почвенный щуп-1

-лопаты штыковые-2-3

-лопаты совковые -2-3

-лопата саперная- 2-3

-Нож почвенный-1

-рулетка-1

-сантиметровая лента-1

-компас-1

-журнал отбора проб-1

-фотоаппарат-1

-рюкзак (1 на каждого сотрудника отряда)

-полевая сумка (персонально у сотрудников, непосредственно ведущих наблюдения и записи)

-мешочки для образцов

-бумага писчая

-бумага оберточная плотная для образцов

-бланки этикеток отбора образцов

-полевые книжки (дневники)(в количестве достаточном для обеспечения записей)

-лупа-1

-топор- 1-2

-пила двуручная (или бензопила легкая)

-карандаши цветные и черные для записей в полевых книжках (достаточное количество, лучше KOOH-I-NOOR)

- бинокль полевой-1

- ножницы- 1-2,

- линейка канцелярская (угольник)

Методика исследовательской работы:

При изучении истории экосистем по торфяникам необходимо, прежде всего, учитывать тип торфяника, от чего в значительной степени зависит и полнота получаемой информации, Торфяники (торфяные залежи, болота) принято грубо делить на три типа:

низинный (евтрофный), верховой (олиготрофный) и переходный (мезотрофный). Для изучения предпочтительнее брать, если есть возможность, торфяники верхового и переходного типов.

Исследование разреза торфяника предполагает полевое морфологическое описание его стратиграфии, т.е. послойного строения, сопряженное с отбором образцов для последующих анализов. Для этой цели используются естественные обнажения, в частности зачищенные стенки карьеров на торфяниках, разрабатывавшихся глубинными способами, или откосы магистральных каналов, а при отсутствии естественных обнажений — шурфы. Обнажения и шурфы дают ясную картину строения торфяника и позволяют отбирать образцы не механически сплошь или через определенные интервалы, а с учетом особенностей строения и степени разложения торфяной залежи. При отсутствии такой возможности исследование разреза производится при помощи торфяного бура, лучше отбирающего образцы с ненарушенной структурой. Обычно используют торфяной бур системы Инсторфа. Морфологическое описание разреза, выявляет чередование слоев различного ботанического состава, структуры, окраски и степени разложения, крупных древесных остатков, минеральных прослоек и других включений, дает представление о динамике торфонакопления и позволяет судить о гидрологических и отчасти климатических условиях соответствующих отрезков голоцена. При описании торфяной залежи необходимо обратить внимание на наличие в ее основании слоя древесного или травяно-древесного торфа, либо залегание под торфом толщи сапропеля. Это свидетельствует в первом случае об образовании торфяника путем заболачивания суши, а во втором случае служит доказательством его озерного происхождения. При описании горизонтов торфяника необходимо обратить внимание на наличие минеральных прослоек различной мощности и генезиса, свидетельствующих о нарушениях торфообразования из-за усиления эрозионных процессов под влиянием причин местного или более общего характера.

–  –  –

После описания торфяника и взятия образцов, ямы разрезов, если проводилась открытая шурфовка) обязательно закапывают в порядке обратном выкопке. Вначале нижние горизонты, затем гумусовые и сверху закрывают дерниной.

На геохимический анализ образцы торфов различных природно-климатических зон необходимо отбирать послойно с интервалом 3 см на всю глубину торфяной залежи, по возможности с отбором подстилающих пород, чаще всего озерного происхождения.

Образцы будут проанализированы на содержание основных геохимических показателей (рН, зольность, Еh, электропроводность), определены различные формы ряда металлов и органического вещества в торфах с целью установления форм нахождения элементов для оценки их миграции и трансформации в залежи. Для изучения отбирают пробы массой 150-500 г. Документация отбора проб должна включать точную привязку к разрезу торфяника. Неорганические компоненты образцов (включения) помещают в пакеты из плотной бумаги или мешочки из светлой ткани. Сырые или легкоразлагаемые образцы, а также органические компоненты лучше отбирать и хранить в мешках из пластика.

Описание пробы проводят одновременно с отбором, так как в результате высыхания и контакта с воздухом цвет может меняться.

На палинологический анализ при отборе образцов необходимо придерживаться следующих общих правил. Выполнение спорово-пыльцевого анализа рыхлых отложений, в том числе торфяников, делится на несколько этапов (Каревская, 1999): 1) отбор образцов на спорово-пыльцевой анализ в полевых условиях; 2) лабораторная обработка образцов для спорово-пыльцевого анализа; 3) просмотр полученного материала под микроскопом; 4) подсчет результатов микроскопического исследования образцов; 5) графическое оформление результатов исследования; 6) интерпретация результатов спорово-пыльцевого анализа рыхлых отложений Отбор образцов является начальным и важнейшим этапом исследования, поскольку конечные результаты спорово-пыльцевого анализа в значительной степени зависят от умения правильно и рационально отобрать образцы из разреза торфяника. Частота отбора образцов, выбор горизонтов, из которых отбираются образцы, технология отбора и т.д.

существенно влияют на детальность и правильность палеогеографических реконструкций.

В соответствии с требованиями палинологов во всех случаях надо выполнять два главных правила отбора. Первое - чистота взятия пробы, так как малейшее засорение посторонней пыльцой приводит к неправильным выводам. Второе - полное опробование всего разреза, поскольку единичные разрозненные образцы не представляют ценности для палеогеографических построений.

Прежде чем начать отбор проб, необходимо определить геоморфологическое положение торфяника и его предполагаемый генезис. Затем приступают к выбору места расчистки или бурения торфяной толщи. Оптимальным считается заложение расчистки там, где вскрывается вся или наибольшая часть разреза. Это позволяет отобрать большую серию образцов. Чем больше образцов анализируется, тем легче выявить динамику растительного покрова во времени и перейти к палеогеографическим и палеоэкологическим реконструкциям. После тщательного выбора места расчистки начинается вскрытие вертикальной стенки обнажения. При этом следует иметь ввиду, что слой вертикальной стенки обнажения, обращенный к дневной поверхности, подвергается окислительным процессам в результате аэрации. Кроме того, в слое, близком к дневной поверхности, происходит интенсивное физическое выветривание породы: многократное сезонное оттаивание и промерзание, увлажнение и высыхание, что также отрицательно сказывается на сохранности микрофоссилий. Поэтому стенка расчистки должна быть зачищена достаточно глубоко - до 0,5-1,0 м. В случае вскрытия толщи торфяника шурфом это условие реализуется естественным путем.

Основания обнажений торфяников, в случае вскрытия их в бортах долин рек, могут быть закрыты мощными осыпями и оползнями. Поэтому в таких случаях, чем ниже по разрезу, тем больше должна углубляться расчистка от дневной поверхности - до 2 и более метров.

Углубление расчистки происходит до тех пор, пока на боковых стенках не появятся горизонтально расположенные слои. Если слои на боковой стенке расчистки наклонны она еще находится в склоновых отложениях. Окончательная зачистка стенки обнажения должна проводиться в горизонтальном направлении (а не сверху вниз по разрезу). Это необходимо для того, чтобы избежать засорения нижележащих слоев пыльцой и спорами из вышележащих горизонтов.

Интервал отбора образцов зависит от характера исследуемых отложений: от их однородности, мощности, от литологических особенностей рыхлой толщи, особенно от ее гранулометрических характеристик. Понятно, что чем крупнее обломочный материал, слагающий рыхлую толщу, тем меньше времени потребовалось на ее формирование.

Тонкие осадки (глины, наилки) и особенно торф накапливаются значительно медленнее, чем, например, валунно-галечные отложения.

В задачу исследований входит выявление поэтапного изменения палеорастительности и палеоклимата. Поэтому, чтобы не пропустить тот или иной этап в развитии растительного покрова, образцы на спорово-пыльцевой анализ из тонкозернистых осадков отбираются чаще, чем из грубообломочного материала. При медленном накоплении каждый небольшой горизонт фиксирует значительный этап в истории палеоландшафтов.

В целом рекомендуется соблюдать следующие интервалы опробования рыхлых отложений на спорово-пыльцевой анализ в зависимости от их гранулометрического состава: торф - интервал отбора образцов 5-10 см; глина, ил, тонкий суглинок - 10-15 см;

супесь, легкий суглинок - 15-20 см; песок - 20-30 см; гравийно-галечные отложения - 40см; валунно-галечные отложения - 60-80 см.

При разметке интервала опробования рыхлой толщи имеет значение ее однородность.

В монотонных отложениях большой мощности интервалы между образцами могут быть увеличены.

Кроме того, необходим отбор образцов близ границ между слоями. Это условие помогает получить дополнительные сведения об условиях начала и конца осадконакопления каждого стратиграфического горизонта; о характере перехода (постепенный, резкий) условий осадконакопления от одного горизонта к другому; о перерывах в осадконакоплении.

Следует избегать отбора образцов из ожелезненных или омарганцованных слоев и линз.

Способ отбора образцов на спорово-пыльцевой анализ предполагает минимальную степень засорения образца пыльцой и спорами из соседних слоев, а также современной пыльцой из воздуха.

При отборе образцов на спорово-пыльцевой анализ необходимо соблюдать следующие правила:

1) бумага, в которую будут заворачиваться образцы, должна быть нарезана по соответствующему размеру заранее и храниться на расчистке в свернутом виде;

2 отбирать образцы лучше вдвоем: один ножом или лопаткой "вырезает" образец, другой держит бумагу или совок у стенки расчистки или шурфа на уровне отбора образца.

Упавшие на осыпь кусочки породы нельзя собирать, так как к ним может прилипнуть осыпавшийся материал и засорить посторонней пыльцой;

3) углубление, из которого выбирается образец, не должно превышать по вертикали 2-4 см. Для увеличения объема образца углубление увеличивается по горизонтали;

4) после отбора каждого образца нож и совок должны тщательно вытираться.

Образцы по возможности берутся снизу вверх по разрезу, чтобы избежать засорения нижних горизонтов материалом из вышележащих слоен.

Объем пробы на спорово-пыльцевой анализ зависит от гранулометрического состава рыхлого горизонта. Рекомендуется следующая навеска пробы в зависимости от отложений: торф - 30-50 г; ил - 100 г; глина, суглинок - 200 г; супесь, песок - 200-300 г;

галечник - 400-500 г. При опробовании галечно-валунных отложений крупные сухие галька и валуны удаляются, отбирается только заполнитель. Кроме того, со стенок гальки и валунов соскребается тонкий материал, в котором, как правило, концентрация микрофоссилий значительно больше.

Образцы заворачиваются в бумагу, в угол которой предварительно вкладывается этикетка.

Данные этикетки дублируются сверху на бумаге. В этикетке должны быть указаны: номер и место разреза, номер образца, глубина отбора образца, литология осадка

-на радиоуглеродный анализ образцы отбираются строго в соответствии с инструкцией, разработанной для этого вида исследования (Методическое руководство, 1987). В соответствии с указанным руководством отбор образцов производят при соблюдении следующих правил:

1) условия залегания образца, возможность загрязнения его посторонним углеродом, глубину от дневной поверхности или стенки естественного обнажения, состав выше- и нижележащих пород, положение грунтовых вод или глубину деятельного слоя (для областей с развитием многолетней мерзлоты), присутствие в слое корешков растений, возможность вторичных перемещений слоя, содержащего образец, и др.;

2) обязательное условие — зачистка стенки обнажения не менее чем на 1 м (в пологих задернованных склонах—не менее чем на 2—3 м), чем ближе к дневной поверхности залегает образец, тем больше опасность его загрязнения;

3) образцы перед упаковкой нельзя обрабатывать никакими химическими реактивами.

Можно лишь удалить видимые глазу остатки корешков растений;

4) отобранные образцы немедленно упаковывают в полиэтиленовые или полипропиленовые мешочки, плотно завязывают в стеклянные или жестяные банки с герметичными крышками. Категорически запрещается упаковывать в бумагу, матерчатые мешочки, вату, картон, стружку и другие материалы, содержащие современный углерод;

5) к каждому образцу необходимо прилагать паспорт (Форма 26), который включает следующие пункты:

Форма 26.

Паспорт образца

1. Дата взятия образца

2. Место взятия образца

3. Тип образца

4. Геоморфологическое положение

5. Стратиграфическое положение (горизонты залегания)

6. Генетический тип вмещающих отложений, их вещественный состав

7. Глубина залегания от дневной поверхности или от стенки обнажения

8. Уровень грунтовых вод или грунта деятельного слоя

9. Наличие и характер растительного покрова на поверхности или на склоне обнажения

10. Глубина проникновения корневой системы

11. Возможность переотложения образца

12. Каким видам анализов (спорово-пыльцевой, диатомовый и т. д.) подвергались отложения из данного разреза и их краткие результаты (если есть)

13. Предполагаемый геологический или археологический возраст образца и краткое его обоснование

14. Какие задачи ставятся при определении абсолютного возраста данного образца

15. Образец отобран (фамилия, организация)

Подпись:

Выбор образца определяется предполагаемым возрастом. В силу того, что предполагаемые для изучения торфяники имеют голоценовый возраст, то для анализа можно использовать уголь, обугленное вещество, древесина, торф, раковины, но гиттии и сильногумусированные почвы могут быть отобраны при отсутствии указанных типов материала. При полевых работах лучше отбирать большее количество материала, что позволит проводить повторные определения и повысить достоверность датирования.

Минимальный вес углеродсодержащего образца для датирования радиоуглеродным методом (в сухом виде в граммах) выглядит следующим образом: древесный уголь (до 30), древесина (до 100), торф (до 200), растительные остатки (до 100), остатки животных тканей в виде шерсти или кожи (до 200), горелая кость (до 500), сильногумусированная почва, содержащая до 2% гумуса и гиттия (до 5000), слабогумусированная почва, содержащая до 1% гумуса (до 10000), раковины моллюсков (до 100), различные карбонатные отложения в пересчете на 100% карбоната (до 100).

По надежности определений углеродсодержащий материал имеет следующий ряд (Методическое руководство, 1987): 1) древесный уголь или обугленное вещество, 2) древесина, 3) травы, растительные остатки, остатки животных тканей (шерсть, кожа, мясо и др.), торф, гумусированные почвы и гиттии, 4) рога, зубы, 5) раковины моллюсков и карбонатные отложения, 6) кости. Так как торфонакопление происходит очень медленно, в среднем около 4—7 см в столетие, толщина образца по вертикали не должна превышать этой величины. По горизонтали, т. е. по площади отбора, размеры образца увеличиваются.

Заключение

Таким образом, в настоящем методическом руководстве собраны воедино и подробно описаны по общей схеме как традиционные полевые методы изучения качества вод, водных и околоводных экосистем, так и их оригинальные модификации, основанные на многолетнем опыте работы авторов в экспедиционных условиях. Методическое руководство должно дать представление студентам, магистрантам, аспирантам и научным сотрудникам, занимающимся проблемами оценки антропогенного влияния экосистемы, не только о частных методиках работ, но и об общем плане организации и проведения региональных исследований в данном направлении.

Вторая часть «Методических указаний...» находится в работе и будет посвящена методам обработки полученных данных и экспериментальным исследованиям.

Литература

1. Абакумов В.А. Руководство по гидробиологическому мониторингу пресноводных экосистем.СПб.: Гидрометеоиздат, 1992. 125с.

2. Антропогенные воздействия на малые озера. Л.: Наука, 1980.- 172 с.

3. Антропогенные изменения экосистем малых озер (причины, последствия, возможность управления). С.-Петербург: Гидрометеоиздат.1991. Кн. 1 и 2.

4. Аршаница Н.М., Лесников Л.А. 1987. Патолого-морфологический анализ состояния рыб в полевых и экспериментальных токсикологических исследованиях // Методы ихтиологических исследований. Л.: ГосНИОРХ НПО Промрыбвод. С. 7Биоценология рек и озер Волжского бассейна: Сб. научных трудов /Яросл. Гос. унт. Ярославль,1985. - 109 с.

6. Богач Я. и др. Животные - биоиндикаторы индустриальных загрязнений // Журнал общей биологии,1988. Т.Х1Х, № 5. - С. 630 - 635.

7. Вальтер Г. Общая геоботаника. М.: Мир, 1982. - 260 с.

8. Викторов С.В., Ремезова Г.Л. Индикационная геоботаника. Изд-во Моск. Ун-та, 1988. - 168 с.

9. Виноградов Б.С., Громов И.М. Краткий определитель грызунов фауны СССР. - Л.:

Наука, 1984. - 140 с.

10. Вольскис Р.С. Продуктивность вида и её исследование в пределах ареала.

Вильнюс: Изд. Минтис, 1973. – 160 с.

11. Временные методические указания по осуществлению отбора гидробиологических проб на малых реках. М., 1994. 39с.

12. Гашев С.Н. К диагностике лесных полевок (Clethrionomys) // Зоологический журнал, Т.LXV, №10, 1986. – С.1588-1589.

13. Гашев С.Н. О влиянии приманки на некоторые демографические параметры популяций грызунов и эффективность их отлова.//Сибирский экологический журнал, № 2, 1995. – С. 177-178.

14. Гашев С.Н. Млекопитающие в системе экологического мониторинга (на примере Тюменской области). Тюмень: ТюмГУ, 2000. - 220 с.

15. Гашев С.Н., Селюков А.Г., Шаповалов С.И. Зимняя полевая практика по зоологии позвоночных. Тюмень: Изд-во ТюмГУ, 2002. – 157 с.

16. Гришина Л.А., Самойлова Е.М. Учет биомассы и химический анализ растений.

Изд-во Моск. Ун-та, 1971. - 99 с.

17. Гуреев А.А. Насекомоядные. Ежи, кроты и землеройки (Erinaceidae, Talpidae, Soricidae). // В серии: Фауна СССР. Млекопитающие. Т.IV, вып.2. Л.: Наука, 1979. с.

18. Даувальтер, В.А. Факторы формирования химического состава донных отложений :

учеб. пособие по дисциплине "Геохимия окружающей среды" для направления 511100 "Экология и природопользование" / В.А. Даувальтер. - Мурманск : Изд-во МГТУ, 2002. - 76 с.

19. Даувальтер. В.А. Исследование физического и химического состава донных отложений при оценке экологического состояния водоемов. Мурманск : Изд-во МГТУ, 2006.- 85с.

20. Динесман Л.Г., Калецкая М.Л. Методы количественного учета амфибий и рептилий // Методы учета численности и географического распределения наземных позвоночных. М. : Из-во АН СССР, 1952. С. 329-341.

21. Д о б р о в о л ь с к а я Е.В. Тяжелые металлы в оперении птиц как природная метка. Мат. Междунар. конф. «Пищевые ресурсы дикой природы и экологическая безопасность населения». Киров, 2004: 122-124.

22. Домбровская А. В., Коренева М. М., Тюремнов С. Н. Атлас растительных остатков, встречаемых в торфе.—М.; Л.: Госэнергоиздат, 1959. 90 с, 137 табл.

23. Ердаков Л.Н., Рябко Б.Я. Количественная мера эффективности механизмов стабилизации сообщества// Журнал общей биологии. Т.ХL11, № 4. 1981. - С. 512 Жадин В.И. Методы гидробиологического исследования.- М.: Высш. шк., 1960.С.5Жадин В.И., Герд С.В. Реки, озера и водохранилища СССР, их фауна и флора. – М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1961. С.3-420.

26. Зимбалевская Л.Н. Фитофильные беспозвоночные равнинных рек и водохранилищ.

– Киев: Наукова Думка, 1981. 5-38 с.

27. Зоопланктон и его продукция. - Л.: ГосНИОРХ, ЗИН АН СССР, 1984. -33 с.

28. Иванов А.Н. Каталог птиц СССР. Л.: Наука, 1976. – 276 с.

29. Кац Н. Я-, Кац С. В., Кипиани М. Г. Атлас и определитель плодов и семян, встречающихся в четвертичных отложениях СССР. М.: Наука, 1965. 365 с.

30. Каревская И.А. Спорово-пыльцевой анализ при палеогеографических и геоморфологических исследованиях./ Под редакцией Г.С.Ананьева.- М.: МГУ.

Географический факультет, 1999.- 114с.

31. Классификация видов торфа и торфяных залежей М.: Гл. Упр. торфяного фонда,

1951. 68 с.

32. Количественные методы в почвенной зоологии. Под ред. М.С.Гилярова, Б.Р.

Стригановой. М., Наука, 1987. 288 с.

33. Коренберг Э.Н., Кучерук В.В. Количественный учет важнейших носителей болезней. // В сб.: Методы изучения природных очагов болезней человека. М.:

Медицина, 1964.

34. Крылов А.В. Гидробиология малых рек. Рыбинск, 2006. 110с.

35. Крылов П.Н. Флора Западной Сибири: Руководство к определению западносибирских растений. Томск: Том. отд-ние Рус. Ботан. о-ва, 12 выпусков, 1927-1964.

36. Кузнецов Б.А. Определитель позвоночных животных фауны СССР. Ч. 3.

Млекопитающие. М.: Просвещение, 1975.- 208 с.

37. Кузякин В.А. Охотничья таксация. М.: Лесная пром-ть, 1979.- 200 с.

38. Кутикова Л.А. Коловратки фауны СССР. - Л.: Наука, 1970, - 744 с.

39. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1990. – 352 с.

40. Ларин С.А. Учет численности охотничье-промысловых животных. М, 1954.- 96 с.

41. Лисицына Л. И. Особенности гербаризациии водных растений, работа с коллекциями // Материалы VI Всеросс. школы-конф. по водным макрофитам "Гидроботаника-2005" (пос. Борок, 11-16 октября 2005 г.). Рыбинск, 2006. С. 27-33.

42. Малышев В.И. Количественный учет млекопитающих по следам. // В кн.: Вестник Дальневосточного филиала АН СССР. Владивосток, 1936, вып.16.- С. 177-179.

43. Мануйлова Е.Ф. Ветвистоусые рачки (Cladocera) Фауны СССР. - Л.: Наука, 1964, с.

44. Медведев Н. В. Экотоксикологический анализ природных популяций птиц и млекопитающих Карелии в условиях нарастающего техногенного загрязнения :

Дис.... д-ра биол. наук : 03.00.08, 03.00.16 : Петрозаводск, 2004. 261 c. РГБ ОД, 71:05-3/79

45. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресных водоемах. Зоопланктон и его продукция. - Л.: Наука, 1982. - 15 с.

46. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресных водоемах. Зообентос и его продукция. – Л.: ГОСНИОРХ, 1983. 1-15 с.

47. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресноводных водоемах. Минсельхозом РФ 20 февраля 2004 г. - Тюмень, 2004. - 17 с.

48. Методическое руководство по изучению и геологической съемке четвертичных отложений / А.К.Агаджанян, Б.А.Борисов, О.А.Брайцева и др.- Л.: Недра, 1987.с.

49. Методы изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 230с.

50. Методы почвенно-зоологических исследований. Под ред.М.С.Гилярова. М., Наука, 1975. 277 с.

51. Моисеенко Т.И. Теоретические основы нормирования антропогенных нагрузок на водоемы Субарктики. Апатиты: Изд-во Кольск. науч. центра РАН. 1997. 260 с.

52. Моисеенко Т.И. Гематологические показатели рыб в оценке их токсикозов // Вопр.

ихтиологии. 1998. № 3. С. 371-380.

53. Моисеенко Т.И., Гашкина Н.А. Формирование химического состава вод озер в условиях изменения окружающей среды М.: Наука. 2010. 267p.

54. Моисеенко Т.И. Водная токсикология: фундаментальные и прикладные аспекты.

М.: Наука. 2009. 400 с.

55. Новиков Г.А. Полевые исследования экологии наземных позвоночных животных.

М.: Сов. наука, 1949.

56. Одум Ю. Экология. В 2-х томах. М.: Мир, 1986. – 704 с.

57. Определитель сосудистых растений Среднего Урала. М.: Наука. – 1994. - 525с.

58. Перфильев В.Б. Микрозональное строение иловых озерных отложений и методы его исследования, Л.: Наука, 1972. – 214 с.

59. Поведение и распределение молоди рыб М.: ИЭМЭЖ АН СССР, 1984. - 152 с.

60. Полевая геоботаника / Под ред. Е.М. Лавренко и А.А. Корчагина. М-Л.: Наука, 1964. - 530 с.

61. Пономарева И.Н. Экология растений с основами биогеоценологии. М.:

Просвещение, 1978. - 207 с.

62. Правдин И.Ф. Руководство по изучению рыб (преимущественно пресноводных).

М.: Пищевая промышленность, 1966. – 376 с.

63. Приклонский С.Г. Пересчетные коэффициенты для обработки данных зимнего маршрутного учета промысловых животных по следам.// Бюллетень МОИП, отд.

Биологии, 1965, т.70(6). - С.5-12.

64. Приклонский С.Г. Инструкция по зимнему маршрутному учету охотничьих животных. М., 1972.- 16 с.

65. Приклонский С.Г. Зимний маршрутный учет охотничьих животных. // В кн.:

Методы учета охотничьих животных в лесной зоне. М., 1973.- С. 35-50.

66. Программа и методика биогеоценологических исследований. М.: Наука, 1974. - 404 с.

67. Пястолова О.А. Разработка методов зооиндикации//Экологические основы рационального использования и охраны природных ресурсов. Свердловск: ИЭРиЖ, 1987. - С. 23 - 25.

68. Равкин Ю.С. К методике учета птиц лесных ландшафтов // В сб.: Природа очагов клещевого энцефалита на Алтае. Новосибирск, 1967. – С. 66-75.

69. Равкин Ю.С., Доброхотов Б.П. К методике учета птиц лесных ландшафтов во внегнездовое время // В сб.: Организация и методы учета птиц и вредных грызунов.

М.: Изд-во МГУ, 1963. – С. 130-136.

70. Равкин Ю. С., Куранова В. Н., Цыбулин С. М. и др. Численность, распределение и пространственно-типологическая неоднородность населения земноводных и пресмыкающихся в Томской и Новосибирской областях // Амфибии и рептилии Западной Сибири. Новосибирск, 2003. - С. 20-35.

71. Райков Б.Е., Римский-Корсаков М.Н. Зоологические экскурсии. М.: Топикал, 1994.

- 640 с.

72. Растительный покров Западно-Сибирской равнины. / Отв. ред. В.В. Воробьев.

Новосибирск: Наука, 1985. - 250 с.

73. Решетников Ю.С., Попова О.А., Кашулин Н.А., Лукин А.А., Амундсен П.-А., Сталдвик Ф. Оценка благополучия рыбной части водного сообщества по результатам морфопатологического анализа рыб // Успехи соврем. биологии. 1999.

Т. 119. № 2. С. 165-177.

74. Руководство по методам гидробиологического анализа поверхностных вод и донных отложений. / Под ред. В.А. Абакумова. Л.: Гидромет., 1983. С. 21-58.

75. Селюков А.Г. Морфофункциональный статус рыб Обь-Иртышского бассейна в современных условиях. Тюмень: ТюмГУ. 2007. 184 с.

76. Исаков П.В., Селюков А.Г. Сиговые рыбы в экосистеме Обской губы. Монография.

Тюмень: ТюмГУ, 2010. 184 с.

77. Селюков А.Г. Изменение морфофункциональных параметров рыб ОбьИртышского бассейна в условиях возрастающего антропогенного влияния.

Автореф. дисс. … докт.биол.наук. М.: МГУ. 2010. 50 с.

78. Соколова Н.Ю. Методы расчета продукции хирономид.- Свердловск, 1985. С. 61Фасулати К.К. Полевое изучение наземных беспозвоночных. М., Высшая школа, 1971. 424 с.

80. Фауна СССР. Млекопитающие. Т. IV, вып. 2. Насекомоядные (MAMMALIA, INSECTIVORA). /А.А.Гуреев. Л.: Наука, 1979. - 503 с.

81. Фауна СССР. Ракообразные. Т. 3. вып. 3. - М., Л.: Изд-во АН СССР, 1948, - 318 с.

82. Федоров В.Д., Соколова С.А. Опыт оценки устойчивости водной экосистемы // Гидробиол. журнал. Т.9. Вып.3 1973.

83. Черепанов С.К. Сосудистые растения СССР. Л.: Наука, 1981. - 510 с.

84. Шварц С.С., Смирнов В.С., Добринский Л.Н. Метод морфофизиологических индикаторов в экологии наземных позвоночных. Свердловск, 1968.- 387 с.

85. Штегман Б.К. Основы орнитологического деления Палеарктики. // Серия: Фауна СССР. Птицы. Т. 1, вып. 2. М.-Л.: 1938. – 156 с.

86. Щербаков А. В., Майоров С. Р. Летняя учебно-производственная практика по ботанике. Ч. 1. Полевое изучение флоры и гербаризация растений. М.: Изд. каф.

высших растений биол. факультета Московского ун-та, 2006. 84 с.

87. Юдин Б.С. Насекомоядные млекопитающие Сибири.- Новосибирск, Наука. Сиб.

отд-ние, 1989.- 360 с.

88. Юргенсон П.Б. Количественный учет мышевидных грызунов и динамика их численности в различных типах леса.// Труды Центр. Лесн. зап-ка, вып.2.

Смоленск, 1937.

89. Ярошенко П. Д. Геоботаника. М.: Просвещение, 1969. 200 с.

90. Hakanson, L. Principles of lake sedimentology / L. Hakanson, M. Jans-son.-Berlin :

Springer-Verlag, 1983.-316 p

91. The international Cooperative Programme on Assessment and Monitoring Effects of Air Pollution on Rivers and Lakes http://www.ICPwater.

Оглавление

Введение Глава 1. Озерные и речные экосистемы

1.1. Выбор районов отбора проб

1.2.Химический состав вод

1.3. Донные отложения

1.4. Растительность водоемов 1.4.1. Высшая водная растительность 1.4.2. Фитопланктон и перифитон

1.5. Микрофлора

1.6. Водные беспозвоночные 1.6.1. Зоопланктон 1.6.2. Макрозообентос

1.7. Рыбы Глава 2. Околоводные экосистемы

2.1. Почвы

2.2. Растительность

2.3. Наземные животные 2.3.1. Млекопитающие 2.3.2. Птицы 2.3.3. Наземные беспозвоночные 2.3.4. Почвенные и амфибиотические беспозвоночные Глава 3. Болотные экосистемы Заключение Литература



Pages:     | 1 ||

Похожие работы:

«Российская Федерация Управление образования Администрации Дмитровского муниципального района Московской области Муниципальное общеобразовательное учреждение РЫБНЕНСКАЯ СРЕДНЯЯ ОБЩЕОБРАЗОВАТЕЛЬНАЯ ШКОЛА 141821, п/о Рыбное, д.26 т/ф 8(496) -2262-366 Дмитровс...»

«вестник тюменского государственного университета. Экология и природопользование. 2016. том 2. № 1. 43-60 Ирина викторовна ФИЛИмоНова1 Леонтий викторович ЭдЕр2 алена ярославовна дяКуН3 тлеш муратович мамахатов4 Удк 553.041 КомпЛЕКСНый аНаЛИЗ СоврЕмЕННого СоСтояНИя НЕФтЕг...»

«Проблемы старения и долголетия, 2015, 24, № 3—4. – С. 257—265 УДК 615.2:577.125.8+612.66 Н. А. Бабенко, Г. В. Стороженко НИИ биологии Харьковского национального университета им. В. Н. Каразина, 1022 Харьков КОРРЕКЦИЯ ВОЗРАСТНОГО НАРУШЕНИЯ СОДЕРЖАНИЯ КАРДИОЛИПИНА В ТКАНЯ...»

«РАБОЧАЯ ПРОГРАММА ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО МОДУЛЯ Проведение лабораторных микробиологических исследований (ПМ. О4) Архангельск 2013 г. Рабочая программа профессионального модуля "Проведения лабораторных микробиологических исследований" (ПМ.04) разработана на основе Федерального государственного образоват...»

«Белорусский национальный технический университет Тульский государственный университет Донецкий национальный технический университет 9-я международная конференция по проблемам горной промышленности, строительства и э...»

«Экологические сказки Экологические сказки Сказка входит в жизнь ребенка с самого раннего возраста, сопровождает на протяжении всего дошкольного детства и остается с ним на всю жизнь. Со сказки начинается его знакомство с миром литературы,...»

«СОГЛАСОВАНО УТВЕРЖДАЮ Заместитель главного государственЗам. Начальника отдела по производного санитарного врача СССР ству и переработке продуктов животА.И. Заиченко новодства 28 декабря 1987 г. В.Н. Сергеев 28...»

«УДК 502.34:352 © А.С. Демиденко, Л.В. Доценко, C.З. Полищук РАЗРАБОТКА МАТЕМАТИЧЕСКОЙ МОДЕЛИ ОЦЕНКИ РИСКА ПРЕВЫШЕНИЯ СРЕДНЕСУТОЧНЫХ ПРЕДЕЛЬНО ДОПУСТИМЫХ КОНЦЕНТРАЦИЙ В СИСТЕМЕ ЭКОЛОГИЧЕСКОГО МОНИТОРИНГА ГОРОДА Разработана с...»

«Юридический адрес: 603147, г. Нижний Новгород, ул. Героя Шнитникова, 24/29 Почтовый адрес: 603001, г. Нижний Новгород, ул. Черниговская, д.17А, оф.4 ИНН 5256149344 КПП 525601001 ОГРН 1165256052565 ОКПО 0...»

«2 ЛИСТ СОГЛАСОВАНИЯ от 15.07.2016 Рег. номер: 2068-1 (15.07.2016) Дисциплина: Хроматографические методы исследования 04.04.01 Химия: Химия нефти и экологическая безопасность/2 года ОФО;...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ КРАСНОЯРСКОГО КРАЯ краевое государственное бюджетное профессиональное образовательное учреждение "Красноярский технологический техникум пищевой промышлен...»

«DEFRO-RU – ІНСТРУКЦІЯ ОБСЛУГОВУВАННЯ TECH Декларація згідності для командоконтролерів ST-DEFRO-RU № 34/2010 Ми, фірма ТЕХ (TECH), вул. С. Баторія 14, 34-120 Aндрихув, з повною відповідальністью заявляємо, що нами виготовляємі терморегулятори DEFRO-RU 230V, 50 Гц виповняють вимоги Розпорядження Miністра...»










 
2017 www.book.lib-i.ru - «Бесплатная электронная библиотека - электронные ресурсы»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.