WWW.BOOK.LIB-I.RU
БЕСПЛАТНАЯ  ИНТЕРНЕТ  БИБЛИОТЕКА - Электронные ресурсы
 
s

Pages:   || 2 |

«ВЛИЯНИЕ ФОСПРЕНИЛА И ГАМАВИТА НА ФИЗИОЛОГИЧЕСКОЕ СОСТОЯНИЕ, ИММУННЫЙ СТАТУС И ПРОДУКТИВНОСТЬ СОБОЛЕЙ ...»

-- [ Страница 1 ] --

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение

высшего профессионального образования «Московская государственная

академия ветеринарной медицины и биотехнологии имени К.И. Скрябина»

На правах рукописи

ВИНОГРАДОВА ЕВГЕНИЯ АЛЕКСАНДРОВНА

ВЛИЯНИЕ ФОСПРЕНИЛА И ГАМАВИТА НА ФИЗИОЛОГИЧЕСКОЕ

СОСТОЯНИЕ, ИММУННЫЙ СТАТУС И ПРОДУКТИВНОСТЬ

СОБОЛЕЙ

06.02.02. – ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология

ДИССЕРТАЦИЯ

на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Научный руководитель:

доктор ветеринарных наук, профессор, Заслуженный работник высшей школы Р.Ф., Лауреат премии правительства РФ Белоусова Раиса Васильевна Москва – 2014

СОДЕРЖАНИЕ

СОДЕРЖАНИЕ

СПИСОК УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ И СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. СОБОЛЕВОДСТВО – ВЧЕРА, СЕГОДНЯ, ЗАВТРА

1.2. БИОЛОГИЯ И БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ СОБОЛЕЙ

1.3. НАИБОЛЕЕ АКТУАЛЬНЫЕ БОЛЕЗНИ СОБОЛЕЙ

1.3.1. ЧУМА ПЛОТОЯДНЫХ

1.3.2. ГАСТРОЭНТЕРИТ (GASTROENTERITIS)

1.3.3. ОПРЕЛОСТЬ ЩЕНКОВ СОБОЛЕЙ (ПОДМОКАНИЕ ЩЕНКОВ)

1.3.4. ГИПОТРОФИЯ ЩЕНКОВ

1.3.5. АНЕМИЯ

1.3.6. СТРИЖКА, СЕЧЕНИЕ И ТЁКЛОСТЬ ВОЛОСА

1.3.7. СТРЕССЫ

1.4. ИММУНОДЕФИЦИТЫ И ИХ ДИАГНОСТИКА

1.5. ИММУНОМОДУЛИРУЮЩАЯ ПРОФИЛАКТИКА И ТЕРАПИЯ В ЗВЕРОВОДСТВЕ. 35

1.6. ОСОБЕННОСТИ НЕСПЕЦИФИЧЕСКОГО ИММУНИТЕТА У ЗВЕРЕЙ

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. ВЛИЯНИЕ ПРЕПАРАТОВ ФОСПРЕНИЛ И ГАМАВИТ НА ФИЗИОЛОГИЧЕСКОЕ

СОСТОЯНИЕ, СОХРАННОСТЬ И ПРОДУКТИВНОСТЬ МОЛОДНЯКА СОБОЛЕЙ.......... 52

3.2. ИСПЫТАНИЕ СХЕМЫ СОЧЕТАННОГО ПРИМЕНЕНИЯ ПРЕПАРАТОВ

ФОСПРЕНИЛ И ГАМАВИТ

3.2.1. ВЛИЯНИЕ ФОСПРЕНИЛ ГАМАВИТ (СОЧЕТАНО)

ПРЕПАРАТОВ И НА

ФИЗИОЛОГИЧЕСКОЕ СОСТОЯНИЕ, ИММУННЫЙ СТАТУС И ПРОДУКТИВНОСТЬ САМОК

СОБОЛЕЙ

3.2.2. ВЛИЯНИЕ ФОСПРЕНИЛ ГАМАВИТ (СОЧЕТАНО)

ПРЕПАРАТОВ И НА

ФИЗИОЛОГИЧЕСКОЕ СОСТОЯНИЕ, ИММУННЫЙ СТАТУС И ПОКАЗАТЕЛИ

ПРОДУКТИВНОСТИ МОЛОДНЯКА СОБОЛЕЙ

3.2.3. ЭКОНОМИЧЕСКИЙ ЭФФЕКТ И ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРИ

ВЫРАЩИВАНИИ МОЛОДНЯКА СОБОЛЕЙ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ РАЗНЫХ ДОЗ

ПРЕПАРАТОВ ФОСПРЕНИЛ И ГАМАВИТ

3.3. АПРОБАЦИЯ СХЕМЫ СОЧЕТАННОГО ПРИМЕНЕНИЯ ПРЕПАРАТОВ ФОСПРЕНИЛ

И ГАМАВИТ В ПРОИЗВОДСТВЕННЫХ УСЛОВИЯХ

3.3.1 ВЛИЯНИЕ ФОСПРЕНИЛ ГАМАВИТ

ПРЕПАРАТОВ И НА ПРОДУКТИВНОСТЬ

САМОК ПРИ АПРОБАЦИИ НА ПРОИЗВОДСТВЕ

3.3.2. ВЛИЯНИЕ ПРЕПАРАТОВ ФОСПРЕНИЛ И ГАМАВИТ НА ПОЛОВУЮ АКТИВНОСТЬ

И ПРОДУКТИВНОСТЬ САМЦОВ

3.3.3. АПРОБАЦИЯ СХЕМЫ СОЧЕТАННОГО ПРИМЕНЕНИЯ ПРЕПАРАТОВ ФОСПРЕНИЛ





И ГАМАВИТ НА ОТСАЖЕННОМ МОЛОДНЯКЕ СОБОЛЕЙ

ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ОТ ПРИМЕНЕНИЯ ПРЕПАРАТОВ

3.3.4.

ФОСПРЕНИЛ И ГАМАВИТ ПРИ АПРОБАЦИИ В ПРОИЗВОДСТВЕННЫХ УСЛОВИЯХ......... 94 ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

ВЫВОДЫ

ПРАКТИЧЕСКОЕ ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ПОЛУЧЕННЫХ НАУЧНЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ..... 107

РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ИСПОЛЬЗОВАНИЮ НАУЧНЫХ ВЫВОДОВ…………………..107 СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ………………………….108 ПРИЛОЖЕНИЯ

Список условных обозначений и сокращений БАВ – биологически активные вещества БАСК – бактерицидная активность сыворотки крови НХО – научно-хозяйственные опыты ИФА – иммуноферментный анализ ИМД – иммуномодуляторы ЛАСК – лизоцимная активность сыворотки крови ОР – общехозяйственный рацион ПДЭ – плацента денатурированная эмульгированная ПЦР – полимеразная цепная реакция РДП – реакция диффузионной преципитации РИФ – реакция иммунофлуоресценции РН – реакция нейтрализации РСК – реакция связывания комплемента СТГ – соматотропный гормон ФАН – фагоцитарная активность нейтрофилов ЦПД – цитопатическое действие ЧП – чума плотоядных

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Русский соболь с давних времен является национальным символом России. Именно соболиные меха превратили Московию в великую империю и имели такое же значение для государственной казны, что и сегодняшние «нефтедоллары» (Трапезов О.В., 2011, 2012). И сегодня его шкурки являются самыми дорогостоящими и пользуются постоянным спросом на международных аукционах у покупателей разных стран. Весь мировой объем шкурок соболя производится в России, обеспечивая отрасли важнейшие конкурентные преимущества (Комарова Л.Г., 2005; Балакирев Н.А., 2011; Колдаева Е.М., 2011; Трапезов О.В., 2011).

В связи с этим за последние годы поголовье клеточных соболей в России только увеличивается. Если на 2000 год было 17300, то на 01.01.2013

– 30677, а к 2020 году планируется увеличение до 50000 самок основного стада, т.е. соболеводство стало перспективной отраслью, но имеется много не решенных проблем (Столбов С.Г., 2011).

В последние годы резко ухудшилась кормовая база. Если раньше в рационе соболя животные белки были за счет цельного мяса (конины) и цельной рыбы, то теперь основу рациона составляют куриные и рыбные отходы, которые не могут заменить полноценный животный белок, т.е.

пушные звери клеточного содержания стали исполнять роль биологического утилизатора. Зверохозяйства поставлены в рамки кормления зверей несбалансированными рационами (Квартникова Е.Г., 1997).

Несбалансированность рационов по белку и незаменимым аминокислотам приводит к алиментарным иммунодефицитам, при этом резко угнетаются все функции врожденного и адаптивного иммунитета, и снижается сопротивляемость организма к неблагоприятным факторам внешней среды (Никонова Э.Б., 2004, 2007). Снижение иммунной реактивности самок в период беременности и лактации отрицательно влияет на показатели их продуктивности (плодовитость, сохранность, выход щенков). Недоброкачественность кормов, поступающих в хозяйство, обусловлена нарушениями условий их заготовки, переработки и хранения.

Часто при длительном хранении они окисляются (Квартникова Е.Г., 1999;

Слугин В.С., 2004), и это ведет к разрушению витаминов в кормосмеси, полигиповитаминозу и интоксикации окисленными кормами. При этом резко угнетаются функции как врожденного, так и адаптивного иммунитета, т.е.

все формы иммунной реактивности. И как следствие, снижается сопротивляемость организма зверей к инфекционным заболеваниям (Слугин В.С., 2004).

В условиях промышленного разведения пушных зверей большое значение приобретают вопросы, связанные с адаптацией организма к различным факторам среды и повышением функциональной деятельности органов и систем с целью улучшения их физиологических и продуктивных качеств (Тютюнник Н.Н., 1999, 2002).

Эту проблему можно решить с помощью иммуномодуляторов (ИМД).

К таким препаратам относят препараты Фоспренил и Гамавит. Они не только оптимизируют работу иммунной системы, но и оказывают благотворное влияние на общее физиологическое состояние организма, что, несомненно, сказывается на улучшении показателей продуктивности животных (Деева А.В., Ростроса П.А., Белоусова Р.В., 2005; Санин А.В., Виденина А.А. и др., 2012).

Цель и задачи исследования. Целью исследования явилось изучение влияния препаратов Фоспренил и Гамавит на физиологическое состояние, иммунный статус и продуктивность соболей.

Для достижения поставленной цели были решены следующие задачи:

1. Провести сравнительное изучение влияния препаратов с иммуномодулирующими свойствами Фоспренил и Гамавит на заболеваемость и отход молодняка, на уровень гемоглобина крови молодняка соболей, интенсивность роста и качество шкурок молодняка.

2. Изучить влияние сочетанного применения препаратов Фоспренил и Гамавит на показатели воспроизводства самок и самцов, интенсивность роста молодняка, биохимические, морфологические и иммунологические показатели крови соболей, уровень поствакцинальных антител, заболеваемость и отход молодняка, размер и качество шкурок.

3. Отработать различные дозы препаратов Фоспренил и Гамавит на молодняке соболей.

4. Разработать рациональную схему сочетанного применения препаратов на всех этапах годового производственного цикла в соболеводстве.

5. Апробировать разработанную схему введения препаратов на поголовье соболей в производственных условиях (самках и самцах родительского стада и растущем молодняке).

6. Рассчитать экономическую эффективность применения препаратов Фоспренил и Гамавит в сравнительном аспекте.

Научная новизна. Впервые изучено влияние препаратов Фоспренил и Гамавит на физиологическое состояние соболей (биохимические и морфологические показатели крови), интенсивность роста подсосного и отсаженного молодняка, на иммунологические показатели (фагоцитарная активность нейтрофилов (ФАН), количество Т- и В-лимфоцитов, бактерицидная (БАСК) и лизоцимная (ЛАСК) активность сыворотки крови), уровень поствакцинальных антител, на показатели воспроизводства самок и самцов, заболеваемость и отход молодняка соболей, размер и качество шкурок.

Разработана схема и выбраны оптимальные дозы применения препаратов с учетом биологических особенностей соболей и производственного цикла.

Практическая значимость работы. Проведенные исследования позволяют рекомендовать сочетанное применение препаратов Фоспренил и Гамавит для повышения продуктивности самок и самцов соболей, повышения сохранности молодняка соболей и увеличения размера и качества шкурок.

Результаты исследований апробированы и внедрены на соболях в ОАО «Племенной зверосовхоз «Салтыковский» Московской области.

На основании результатов исследований разработаны методические рекомендации по сочетанному применению иммуномодуляторов Фоспренил и Гамавит в соболеводстве, утвержденные председателем Отделения ветеринарной медицины Российской академии сельскохозяйственных наук «Инфекционная патология животных» академиком РАН М.И. Гулюкиным и учебно-методической комиссией ветеринарно-биологического факультета ФГБОУ ВПО МГАВМиБ.

Результаты исследований используются в учебном процессе кафедры ветеринарной вирусологии им. В.Н. Сюрина ФГБОУ ВПО МГАВМиБ по дисциплине «Вирусология и биотехнология».

Личный вклад соискателя. Автор лично проводила научнохозяйственные опыты в течение трех производственных циклов, непосредственно осуществляя исследования по изучению влияния препаратов Фоспренил и Гамавит на физиологическое состояние, иммунный статус и продуктивность соболей, разработку методики сочетанного применения препаратов, анализ и обобщение полученных результатов. Автор приносит глубокую благодарность за оказание научно-методической помощи доктору сельскохозяйственных наук профессору Т.М. Чекаловой, ведущему научному сотруднику сектора звероводства ГНУ НИИПЗК РАСХН им. В.А.

Афанасьева Н.Н. Лоенко, главному ветеринарному врачу ОАО «Племенной зверосовхоз «Салтыковский» Н.С. Грачевой за помощь в организации научных исследований.

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены на международной научно-практической конференции, проходившей в МГАВМиБ (Москва, 2012 г.), ежегодных отчетных заседаниях методической комиссии МГАВМиБ (Москва, 2011, 2012, 2013 г.).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 5 научных работ, в том числе 3 в научных журналах, рекомендованных ВАК РФ (Ветеринария, Ветеринарная медицина, Кролиководство и звероводство).

Структура и объем работы: материалы диссертации изложены на 139 страницах и включают введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение полученных результатов, выводы, данные о практическом использовании научных результатов, рекомендации по использованию научных выводов. Список использованной литературы включает 190 источников, из которых 11 – иностранных авторов.

Работа содержит 27 таблиц, 28 рисунков и 11 страниц приложений.

Основные положения и результаты, выносимые на защиту:

1. Сравнительный анализ результатов влияния препаратов Фоспренил и Гамавит на физиологическое состояние, заболеваемость и продуктивность молодняка соболей.

2. Сочетанное применение препаратов Фоспренил и Гамавит оптимизирует физиологическое состояние, иммунный статус и увеличивает продуктивность самок, самцов и молодняка соболей.

3. Экономическая эффективность применения Фоспренила и Гамавита.

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Соболеводство – вчера, сегодня, завтра Россия издавна славилась «мягким золотом». Так называли шкурки соболей, горностаев и других ценных пушных зверей. Долгое время «мягкое золото» использовали вместо денег при расчете за товар, торговые пошлины.

По оценкам историков-экономистов, в XII – XV века соболиные шкурки составляли более 70 % государственного валового продукта, что имело значение для доходной части государственного бюджета. Одна средняя по качеству шкурка соболя стоила 1 рубль, что было равно стоимости рабочей лошади или коровы (Трапезов О.В., 2012).

Повышение спроса на русскую пушнину способствовало варварскому истреблению пушных зверей, особенно соболя. К концу 19 столетия восстановление поголовья соболей уже не могло осуществляться естественным приплодом. Это создало предпосылки для содержания пушных зверей в неволе. Уже в 18 веке практиковалось «избяное» звероводство, т.е.

отлавливали на воле беременных самок, получали от них щенков и держали их до получения шкурки (Берестов В.А., 2002). Затем появилось островное звероводство. Так в 1927 году на ряде островов Приморья были выпущены соболя для размножения на ограниченной территории для последующего отлова, но более перспективным оказалось разведение зверей в неволе.

Вопрос о клеточном разведении соболей был поставлен особенно остро в двадцатых годах прошлого столетия, когда в результате их усиленного промысла перед революцией и в годы гражданской войны соболя были почти истреблены, и единственное, что можно было сделать для их сохранения это добиться размножения зверей в клетках. Для решения это вопроса было организованно несколько соболиных ферм: на Соловецких островах, в Байкальском питомнике, Тавутайском питомнике, на биостанции юных натуралистов в Москве.

Сразу после гражданской войны была создана организация для развития пушного звероводства и охотничьего промысла – «Пушногосторг».

В 1927 году «Пушногосторг» принял решение расширить ассортимент экспортной пушнины путем клеточного разведения ценных видов зверей (особенно соболя) на специальных фермах (Милованов Л.В., 2001).

Экспортная торговля требовала поставок особо ценных шкурок, так в сравнительной коммерческой цене одна шкурка соболя равнялась 1250-ти шкурок белки.

В 1924 году организована соболиная ферма при Московском зоопарке, которой руководил П.А. Мантейфель. 3 апреля 1929 года впервые был получен приплод от соболей в неволе. Второй приплод в неволе был получен в Соловецком соболином питомнике 27 апреля 1929 года.

Первым хозяйством, в котором разведение соболей было поставлено на промышленную основу, стал зверосовхоз Пушкинский, где с 1931 года стали регулярно получать приплод соболей. Если в первые годы разведения соболей основная цель заключалась в сохранении вида, то уже в 40-х годах этот вопрос отпал (поголовье диких соболей заметно увеличилось). Перед звероводами была поставлена новая задача – вывести «идеального соболя», объединяющего все положительные качества различных кряжей: с крупным размером тела, темной окраской и шелковистым опушением (Трапезов О.В., 2011).

В послевоенное время развитию соболеводства, как наиболее перспективному и рентабельному объекту звероводства, было уделено особое внимание. Соболиная шкурка стоила примерно в десять раз дороже шкурки серебристо-черной лисицы.

В 1947 г. И.Д. Старков, один из известных специалистов соболеводства, писал: «Основным, наиболее перспективным и наиболее рентабельным объектом советского звероводства должен быть соболь, мех которого является самым дорогим! Единственным поставщиком соболиных мехов на международный рынок является СССР. Клеточное разведение соболей освоено только в нашей стране. Эту благоприятную коньюктуру нужно использовать и всемирно формировать разведение соболей, чтобы соболь как можно скорее стал ведущим объектом советского звероводства не только в количественном отношении, но и по рентабельности содержания».

Сегодня Россия – единственная в мире страна, в которой разработана и успешно внедрена в производство промышленная технология клеточного разведения соболя.

За последние пять лет общее маточное поголовье соболей увеличилось на 34,8 %. Этому в определенной степени способствовала государственная поддержка соболеводства в виде субсидий на содержание племенного маточного поголовья соболей за счет увеличения в 3 раза (по сравнению с другими видами пушных зверей) ставки дотаций. Разведение соболя, несмотря на опережающий рост затрат на производство шкурок по сравнению с их реальной ценой, стабильно рентабельно. Этому способствует монополия России на клеточное разведение соболей и сохранение устойчивого спроса на данный вид пушнины на мировом рынке. Удержанию высоких цен на шкурки соболей клеточного разведения содействует реализация шкурок соболей на единой площадке – на международном пушном аукционе ВО «Союзпушнина». Для развития отрасли соболеводства

Россия располагает всеми необходимыми предпосылками:

- устойчивый спрос на шкурки соболя на мировом рынке;

- монополия на клеточное разведение соболя;

- высокая экономическая эффективность разведения клеточных соболей по сравнению с другими видами пушных зверей;

- высоко продуктивные породы соболей и сохраненная от негативных влияний перехода на рыночные отношения племенная база (Столбов С.Г., Колдаев Н.А., Амерханов Х.А., 2011).

Для успешного развития клеточного соболеводства Департаментом животноводства и племенного дела Минсельхоза России совместно с НО «Российский пушно-меховой союз» разработана отраслевая целевая программа «Развитие клеточного разведения соболей (соболеводства) в Российской Федерации» на 2011 – 2013 г.г. и на период до 2021 г.».

Программа утверждена приказом Минсельхоза России № 110 от 27.04.2011 г.

В ней намечены актуальные мероприятия по созданию экономических и технических условий для устойчивого развития отечественной отрасли соболеводства и увеличения объемов производства шкурок соболей клеточного разведения с 30 тыс. штук в 2011 году, до 50 тыс. штук в 2013 году и до 100 тыс. штук в 2021 году.

За период клеточного разведения соболей выведены две породы, отличающиеся между собой преимущественно окраской волосяного покрова.

Порода черный соболь создана в зверосовхозе «Пушкинский» Московской области на основе воспроизводительного скрещивания отловленных на воле амурских, енисейских, алтайских и баргузинских соболей и утверждена в качестве породы в 1968 г.

Порода Салтыковская-1 создана в ОАО «Племенной зверосовхоз «Салтыковский» Московской области и утверждена в качестве селекционного достижения в 2002 году (Колдаева Е.М., Милованов Л.В., Трапезов О.В., 2003).

Исходным поголовьем для ее создания послужили соболи зверосовхоза «Пушкинский». Однако в качестве селекционируемого типа в данном хозяйстве были выбраны животные более светлой окраски. В процессе создания породы проводилось прилитие крови диких соболей (Столбов С.Г., Колдаев Н.А., 2011).

В хозяйстве был определен и оформлен приказом селекционируемый тип соболя, который характеризуется следующими данными: размер крупный, качество опушения пышное, шелковистое, уровненное, средняя длина волоса: направляющих у самок – 45,6; самцов – 48 мм; остевых -34-36 мм; пуховых 23,5 - 24,3 мм, соответственно (Митина А.В., 1980).

Это позволило выделить наших зверей в отдельную породу, характеризующуюся однородной темно-коричневой окраской волосяного покрова, более светлой окраской ушей и мордочки, крупным размером (средняя живая масса самок 1,16 кг, самцов 1,55 кг.) и хорошей воспроизводительной способностью (выход на самку 2,5 – 2,8 щенка).

Особой гордостью салтыковских соболеводов является «седой» соболь, поголовье которого целенаправленно наращивается в связи с повышенным на аукционе спросом на шкурки с «серебром». В настоящее время «Салтыковский» соболь является гордостью Российского звероводства.

Шкурки его пользуются постоянным спросом (Сайдинов А.В. в интервью Гладилову Ю.И., 2012).

1.2 Биология и биологические особенности соболей Соболь (Martes zibellina L.) относится к отряду хищных, семейству куницеобразных и роду куньих. На территории России обитает только один вид соболя, зоологи выделяют девять подвидов соболя: баргузинский, саянский, дальневосточный, енисейский, тобольский, камчатский, якутский, алтайский, тунгусский (Тимофеев В.В., Надеев В.Н., 1955).

В естественных условиях соболь обитает в таежных районах Сибири и Дальнего Востока, включая Камчатку, Сахалин, Курильские острова. Лишь в некоторых районах ареала соболь пересекает границу России – изредка его можно встретить в Монголии и Северо-Восточном Китае, однако опушение и окраска этих животных низкого товарного качества (Тимофеев В.В., 1959;

Павлюченко В.М., 1979; Бакеев Н.Н., Монахов Г.И., Синицын А.А., 2003).

Для дикого соболя характерна большая географическая изменчивость окраски волосяного покрова. Окраска дикого соболя варьирует от светлокоричневой (песочной) до почти черной. Для дикого соболя характерна более светлая по сравнению с туловищем окраска головы и наличие горлового пятна белого, кремового или желто-оранжевого цвета (Сабанеев Л.П., 1875;

Павлюченко В.М., Уткин Л.Г., Григорьев М.Ю. и др., 1979; Колдаева Е.М., 2004). Живая масса самцов соболя дикого740-1950 граммов, самок 520 - 1650 граммов (Бакеев Н.А., Монахов Г.И., Синицын А.А., 2003). Самые крупные уральские и камчатские соболя – в массе своей светлые с грубым мехом.

Темных соболей больше встречается среди баргузинских и якутских соболей, которые, кроме того, славятся шелковистостью меха, но размер их тела небольшой (Трапезов О.В., 2011). Как и у других хищников умеренных широт, основной обмен веществ в летнее время у соболей повышается, а зимой понижается. Соответственно меняется и их масса: летом она наименьшая, зимой наибольшая (Берестов В.Н., 2002; Паркалов И.В., 2004).

Образ жизни в основном наземный. Гнездо устраивает под поваленными стволами деревьев, в россыпях камней, иногда в дуплах (Наумов В.П., 1973;

Бакеев Н.Н., Монахов Г.И., Синицын А.А., 2003).

Соболь – оседлый хищник, его охотничья территория составляет от 25 до 700 га. Соболь относится к полифагам, т.е. хищникам, питающимся разнообразной пищей – и животной, и растительной. В основном он питается мелкими животными: мышевидными грызунами, бурундуками, птицами, насекомыми, ящерицами, мертвой рыбой (Тимофеев В.В., Надеев В.Н., 1955, Насимович А.А., 1973). В осенне-летний сезон их организм нуждается в кормах легко усваиваемых, богатых углеводами и витаминами (малина, брусника, рябина, орехи). Потребление ягод увеличивается летом, а высококалорийных кедровых орехов – осенью. Разнообразие пищи обеспечивает ему устойчивую кормовую базу. Такое разнообразное питание соболя обусловило биологические особенности строения желудочнокишечного тракта и пищеварения. Ротовая полость обладает малой вместимостью, в результате чего пища почти не пережевывается, объем желудка составляет 120 - 250 см3 (Тихонов И.

Ф., 1977). По данным Павлюченко В.М., Уткина Л.Г., Григорьева М.Ю. и др. (1979) объем желудка у самок 88-90 см3, у самцов 113 - 115 см3. Желудок имеет форму изогнутого мешка с тонкими эластичными стенками, пища в нем не растирается и не измельчается. Кишечник у соболя составляет 180 – 200 см., это длиннее чем у норки (140 – 170 см.), так как соболя потребляют большее количество растительной пищи, по сравнению с норкой. Не переваренные остатки корма обнаруживаются в кале через 2 - 3 часа, через 6 часов желудок и кишечник на 80 - 90 % освобождаются от пищевых масс, а через 20 - 24 часа полностью (Берестов В.А., 2002; Балакирев Н.А., Перельдик Д.Н., 2010). У соболей мясо-рыбные корма перевариваются на 85 – 95 %, а растительные на 40 – 75 %. Для нормального пищеварения у соболей углеводы должны составлять 15

– 20 % от калорийности рациона (Павлюченко В.М., 1979). По исследованиям Астраханцева В.И. (1972) у соболей из-за разнообразия питания имеются некоторые особенности пищеварения: при пищеварении в кишечнике в норме имеют место процессы брожения и гниения, причем брожение интенсивнее гниения в 1,5 раза.

Размножается соболь один раз в году. Гон бывает летом (с 22 июня по 7 августа). Величина помета от 1 до 7 щенков, в среднем 3 щенка. Соболята рождаются весом в 30 грамм, длиной в 9 - 11,5 см. (Петряев П.А., 1941). На воле в пятнадцатимесячном возрасте практически все самки соболей вступают в гон, оплодотворяются (Залекер В.Л., 1952, 1956) и дают первый приплод в 2 года.

Воспроизводительные способности совхозных самок соболей, покрытых в однолетнем возрасте, значительно ниже, чем у таковых в природной популяции. В структуре дикой популяции преобладают однолетние самки (56 %), в совхозной популяции самки однолетки составляют всего около 17 %. Сравнение показателей размножения соболей зверосовхоза «Салтыковский» и диких показало, что среди покрытых клеточных самок-однолеток приплод дают 18 % (при покрытии 31,1 %), а диких - 60,6 % (Маматкина Э.Г., Монахов Г.И., 1970). В неволе регулярное размножение соболей начинается с трхлетнего возраста (Афанасьев В.А., Перельдик Н.Ш., 1966; Ильина Е.Д., 1980).

Для соболей клеточного разведения характерно более позднее половое созревание, в возрасте 15-16 месяцев спаривается только 20 – 30 % самок, при этом около 80 % из них остаются пустыми. Среди двухлетних самок щенятся только 50-55 %, среди трхлетних – 70-75 % (Ильина Е.Д., Соболев А.Д. и др., 2004).

На половое созревание влияют как наследственные факторы, так и условия кормления и содержания (Маматкина Э.Г., 1968; Маматкина Э.Г., Монахов Г.И., 1970).

Гон у клеточных соболей проходит с середины июня до середины августа. Половая активность самцов проявляется только в период гона, т.е. 2

– 2,5 месяца. Созревание половых продуктов у самцов происходит в предгонный период в апреле – мае, т.е. процесс сперматогенеза начинается за 2 – 2,5 мес. до гона и прекращается сразу после него (Старков И.Д., 1947).

Основная масса спариваний приходится на июль. У самок соболей в период половой охоты очень четко выражены изменения петли (вульвы) (Мантейфель П.А., 1928). При наличии явных признаков половой охоты самки соединяются с самцами. У самок соболей одна течка, во время которой состояние половой охоты может повторяться три-четыре и большие число раз, в среднем с интервалом 10 - 12 дней. Состояние охоты длится от одного до трех дней. В течение этого периода самка многократно спаривается (Клер Р.В., 1941; Бернацкий В.Г., 1980). Самца соединяют с самкой в течение всего периода половой охоты, определяемой по внешнему виду петли (набухшая) и поведению зверей. Овуляция у соболей провоцированная и происходит через 3,5 суток после спаривания (Бернадский В.Г., Снытко Э.Г., Носова Н.Г., 1980). За период гона у соболей происходит одна овуляция. После овуляции охота не повторяется. Если после спаривания овуляция не наступила, то охота продолжается. Во время коитуса сперматозоиды попадают во влагалище, оттуда – в рога матки и яйцеводы и, встречаясь с яйцеклетками, оплодотворяют их (Старков И.Д., 1947). Яйцо после оплодотворения начинает дробиться, но проходят только первые стадии своего развития, достигнув трофобластулы. По данным Бакеева Н.Н., Монахова Г.И., Синицына А.А. (2003) у соболей часть бластоцист может перемещаться из одного рога матки в другой, для равномерного размещения зародышей в матке перед имплантацией. Не исключено, что с такой трансмиграцией связана некоторая гибель и рассасывание отдельных бластоцист. Стадии развития оплодотворенной яйцеклетки по Старкову И.Д.

(1947) следующие:

Период дробления яйца и образования трофобластулы 1.

продолжительностью несколько дней.

Латентный период 7 – 8 месяцев.

2.

Развитие и формирование зародыша после имплантации 30-35 3.

дней.

По данным Баевского Ю.Б. (1957) во время диапаузы (латентного периода) отмечается непрерывное, хотя и замедленное развитие зародыша до его имплантации (в конце февраля – начале марта).

По данным Исаковой Г.К. и Трапезова О.В. (2012), которые изучали эмбриогенез во время диапаузы у куньих (американская норка, соболь), в этот период подавлена митотическая активность и синтез нуклеиновых кислот в клетках собственно зародыша, а в клетках трофобласта идет синтез нуклеиновых кислот, амитотическое деление и увеличение числа клеток, т.е.происходит не только рост трофобласта, но и его дифференциация.

Часто, особенно у молодых самок, отмечается пропустование. Ряд ученых, таких как Клер Р.В. (1941), Старков И.Д. (1947), Залекер В.А.

(1955), Шварц Т.В. (1975), объяснили пропустование самок отсутствием овуляции. Основной причиной отсутствия овуляции у самок в 15 и 27 месяцев является незавершенность процессов полового созревания, т.е.

недостаточный рост фолликулов в яичниках (Шварц Т.В., 1975).

Под данным Бернадского В.

Г., Снытко Э.Г., Носовой Н.Г. (1980) стрессы препятствуют достаточной выработке гонадотропных гормонов гипофиза, необходимых для вызова овуляции, в следствие воздействия паратипических факторов. По мнению Кладовщикова В.Ф. (1977), к паратипическим факторам можно отнести особенности высшей нервной деятельности соболей – повышенная возбудимость (стрессы) и глубокое торможение (крепкий сон). По данным Беляева Д.К. и Уткина Л.Г. (1960) пропустование молодых самок соболей обусловлено отсутствием овуляции у них, а также гибелью эмбрионов. Частичная и полная гибель эмбрионов выше у более плодовитых самок. По данным Баевского Ю.Б. (1957) эмбриональная смертность диких соболей составляет 12,3 %, а фактическая плодовитость 2,68 желтых тел; у совхозных соболей 2,72 желтых тел у однолеток и 3,46 у двухлеток. Низкая размножаемость соболей в совхозах является показателем плохой приспособляемости соболей к условиям неволи, как следствие консерватизма центральной нервной системы. По данным Беляева Д.К., Терновской Ю.Г. (1973, 1975) и Korhonen H., Niemela P. (2001) индивидуальные особенности поведения соболей связаны со всеми показателями воспроизводства (возраст полового созревания, наступление течки, плодовитость и процент оплодотворения). Процент самок, давших приплод, зависит от поведения – агрессивные – 81 %, трусливые – 73 %, спокойные – 91 %. Организм соболя несет черты плохой подвижности торможения и возбуждения. У него возникают припадки при малейшем стрессе (взвешивание, прививка), и сама неволя подавляет половую функцию зверей (Уткин Л.Г., 1980). По данным Усенко В.И. (2000) под влиянием ситуации на примере кормовой депривации происходит угнетение развития фолликулярного аппарата яичников, проявляющееся атрезией первичных полостных фолликулов.

По данным канадских ученых у куньих стресс может препятствовать эмбриогенезу (Hausen M., Murphy B.D., 1988).

Самки, покрытые только в один период охоты, имели общую продолжительность развития эмбриона – от 231 до 315 дней (в большинстве 270-289 дней) (Павлюченко В.М., Уткин Л.Г., Григорьев М.Ю. и др., 1979).

Соболята рождаются весом 25-30 граммов, длиной 100 мм, слепыми, с закрытыми слуховыми проходами, без зубов, почти без волосяного покрова.

Через 3 - 4 дня они обрастают темно-серым пухом. Глаза открываются в месячном возрасте, зубы появляются на 28-30 день, слуховые проходы открываются на 23 - 27 день (Мантейфель П.А., 1941; Старков И.Д., 1947).

По данным Мантейфеля П.А. (1934) среднесуточный прирост у соболей в первые четыре декады после рождения колеблется в пределах от 8 до 13 грамм, после открытия глаз среднесуточный прирост увеличивается в среднем на 12 грамм.

Растут щенки быстро, и к месячному возрасту их масса увеличивается в 20 раз. В 30 - 35 дней они начинают поедать корм. Отсаживают молодняк от матерей в возрасте 45 - 55 дней. После отсадки молодняк желательно держать парами: при этом он лучше растет и у него не наблюдается самопогрызания. В два месяца щенок соболя весит 600 - 1000 грамм. Затем интенсивность роста замедляется. В возрасте 3 – 3,5 месяца (конец июля – начало августа) молодняк желательно рассадит по одному. С девяти недельного возраста начинается линька ювенального волоса, которая заканчивается к пяти месяцам. К 4-х месячному возрасту самцы достигают массы 1100 - 1500 г., самки – 800 - 1200 г., к 6 - 7 месячному возрасту молодняк весит как взрослые звери (Ильина Е.Д., Соболев А.Д., Чекалова Т.М. и др., 2004). Опушение у них хорошо развито, и после бонитировки зверей, неотобранных на племя, убивают на шкурку. Молодняк, оставленный на племя, в течение года числится в группе молодняка прошлых лет рождения, после чего его переводят в основное стадо. План дается только на самок двухлетних и старше (возраст покрытия). Позднее половое созревание у клеточных соболей является все еще не решенной проблемой, влияющей на рентабельность соболеводства (Паркалов И.В., 2004; Балакирев Н.А., 2011).

В первые годы щенения выход молодняка ниже, чем в последующие (Уткин Л.Г., 1980). Плодовитость на основную самку составляет: 1 год – 0,53 щенка, 2 год – 1,75 щенка, 3 год – 2,63 щенка, 4 год – 2,83 щенка, 5 год – 3,26 щенка, 6 год – 3,24 щенка, 7 год – 3,21 щенка, 8 год – 3,76 щенка, 9 год – 3,78 щенка, 10 год – 3,48 щенка, 11 год – 2,52 щенка (Павлюченко В.М., Уткин Л.Г., Григорьев М.Ю. и др., 1979). Самки, покрытые в первый год, являются очень ценными и размножаются значительно лучше (Маматкина Э.Г., 1968).

Соболь нормально размножается до 12 - 14 лет и живет 15-21 год (Ильина Е.Д., Соболев А.Д., 1990). На снижение показателей делового выхода молодняка пушных зверей в значительной степени влияет количество пропустовавших, неблагополучно родивших самок и высокий процент раннего (первые дни после рождения) отхода молодняка (Ильина Е.Д., 1980).

Причиной этого является низкая резистентность организма самок, особенно в период беременности и лактации, а также биологические особенности соболей, связанные с репродуктивными функциями: провоцированная овуляция, длительная эмбриональная диапауза, длительное половое созревание и повышенная возбудимость (низкая устойчивость к стрессам).

Знание особенностей физиологии размножения соболей, роста и развития молодняка дат возможность применять иммуномодуляторы в наиболее «критические» периоды жизни зверей, предупреждая тем самым снижение иммунного статуса и продуктивности соболей, что ведет к улучшению хозяйственных показателей (Тютюнник Н.Н., 1999, 2002;

Никонова Э.Б., 2007).

1.3. Наиболее актуальные болезни соболей 1.3.1. Чума плотоядных Чума плотоядных (ЧП) – остропротекающая контагиозная болезнь плотоядных, характеризующаяся лихорадкой, острым катаром слизистых оболочек, пневмониями, кожной экзантемой и поражением нервной системы.

Распространена повсеместно (Сюрин В.Н. и др., 1998). Вызывается вирусом семейства парамиксовирусов, рода морбилливирус.

Из зверей клеточного содержания к вирусу чумы плотоядных восприимчивы лисицы, песцы, еноты, соболя, норки и хорьки. Наиболее подвержены заболеванию щенки, включая и подсосных, если их матери не были привиты до спаривания.

Источником возбудителя инфекции является зараженное животное.

Переболевшие звери могут выделять вирус 3 - 5 месяцев. Заражение происходит в основном респираторным и алиментарным путями. Возможен разнос вируса по воздуху на расстояние до 12 м. (Слугин В.С., 2004).

У зверей различных видов клинические признаки зависят от течения болезни. У лисиц, песцов, норок и соболей при легочной форме отмечают лихорадку, кашель, серозные и серозно-гнойные истечения из глаз и носа, опухание век, ноздрей и кашель, при кишечной форме – понос, при нервной – судороги, эпилептические припадки, параличи конечностей (Самуйленко А.Я. с соавт., 2006).

Патологоанатомические изменения не являются достаточно характерными и обычно соответствуют форме болезни и характеру осложнений. У соболей преобладают воспалительные изменения в легких.

ЧП диагностируют на основании эпизоотических, клинических и патологоанатомических данных, а в затруднительных случаях ставят биопробу на 30 – 45-дневных щенках собак, лисиц, песцов, норок или на белых африканских хорьках. Из лабораторных методов используют микроскопию телец-включений, выделение вируса в культуре клеток и идентификацию его в РИФ, РН, РСК, РДП, ИФА, ПЦР, серодиагностику (Белоусова Р.В., 2007).

В Российской Федерации и странах СНГ для профилактики ЧП применяют сухие культуральные вирус-вакцины из аттенуированных штаммов. Живая вакцина против ЧП обеспечивает выраженный гуморальный и клеточный иммунный ответ и полную защиту от болезней (Самуйленко А.Я с соавт., 2006). Для специфической профилактики ЧП у соболей применяется вакцина Бионор – D, штамм ЭПММ (ООО «БИОЦЕНТР», г.

Москва) молодняку с 8 недельного возраста, внутримышечно. Вакцина вызывает формирование иммунного ответа через 14 - 21 день после однократного введения продолжительностью один год. По данным Бирюковой М.Н. (1978), Данилова Е.П. (1980) минимальным защитным титром является 2 log2, что соответствует разведению сывороток 1:4.

1.3.2. Гастроэнтерит (Gastroenteritis) Гастроэнтерит – воспаление желудка и кишечника с последующими функциональными нарушениями их моторной и секреторной деятельности.

Болезнь проявляется чаще всего – диареей (Слугин В.С., 2004).

Гастроэнтерит относится к числу самых распространенных заболеваний пушных зверей. Поражение желудка и кишечника животных происходит через несколько часов после потребления испорченных необезвреженных кормов. У соболей гастроэнтерит в отдельные годы принимал массовый характер (Слугин В.С., 2004).

Причиной первичного гастроэнтерита в подавляющем большинстве случаев является поедание необезвреженных условно годных и недоброкачественных кормов. Другими причинами появления гастроэнтерита могут быть резкая смена кормов, перекармливание. Большую роль в этиологии гастроэнтеритов играют дисбактериозы, развивающиеся при нарушении кормления или продолжительным скармливанием антибиотиков. Вследствие дисбактериоза изменяется рH содержимого кишечника, что влечет за собой нарушение пищеварения, всасывания и моторики кишечника (Берестов В.А., 1978).

У соболей большое значение в возникновении гастроэнтерита имеют две группы причин: а) недоброкачественные корма и неполноценный рацион;

б) голодная диета (Слугин В.С., 2004).

Голодная диета. В соболеводстве стали практиковать суточную голодную диету во время проведения массовых зоотехнических мероприятий или в дни праздников. Суточное голодание соболей служит мощным стрессором именно для данного вида животных, обладающих чрезмерной возбудимостью. Под действием голодной диеты у соболей развивается стресс и тяжелое расстройство секреторной деятельности желудочно-кишечного тракта, вследствие чего возникает массовое поражение язвенной болезнью желудка и острые желудочные кровотечения с летальным исходом.

У соболей гастроэнтерит чаще всего начинается в период отсадки щенков и продолжается 2 - 3 месяца. Вначале у многих, если не у большинства, животных отмечают несформированный кал («коровий кал») ржаво-бурой окраски, который нередко содержит плохо переваренные частички корма и значительное количество слизи молочно-белого, желтозеленого, кремового (с примесью крови) оттенка. Кал бывает и кашицеобразный консистенции, грязно-серого цвета. У взрослых соболей очень часто находят под клеткой дегтеобразные испражнения.

Патологоанатомические изменения. Слизистая оболочка желудка и кишок набухшая, гиперемирована, покрыта густой слизью, иногда имеет кровоизлияния или язвы. Часто отмечают и другие изменения – кровенаполнение или дистрофия печени, отек легких. При хроническом катаре стенка кишечника истончена, пейеровы бляшки выступают в виде округлых зон с черными крапинками (Берестов В.А., 1978).

Кишечник гиперемирован (окрашен в серовато-красный цвет). В просвете кишечника содержаться слизистые массы бурого цвета. Слизистая истощена, красного цвета, есть пятнистые или полосчатые кровоизлияния (Зуйкова Е.А., Петросян С.Л., 1953).

Профилактика. Чтобы предупредить заболевание зверей гастроэнтеритом, нужно установить надлежащий ветеринарно-санитарный контроль на кормокухне и не допускать к скармливанию недоброкачественные корма. Ежедневно следить за поедаемостью кормовой смеси зверями, за консистенцией и цветом их испражнений.

1.3.3 Опрелость щенков соболей (подмокание щенков) Опрелость щенков соболей – незаразная болезнь, проявляющаяся мацерацией и воспалением кожи в области живота и внутренней поверхности задних конечностей (Слугин В.С., 2004). По мнению некоторых ученых главной причиной опрелости щенков соболей является неудовлетворительная вентиляция домиков (Слугин В.С., 2004). Но есть и другие мнения. Это сезонное заболевание щенков соболя, связанное с усиленной секрецией брюшной железы, маслянистый секрет которой приводит к слипанию волос и подопреванию кожи (Ильина Е.Д., Соболев А.Д., Чекалова Т.М. и др., 2004).

По данным Чекаловой Т.М. с соавт. (1992) секрет брюшной железы, попадая на волосы и склеивая их, создает благоприятные условия для развития микрофлоры. Степень тяжести заболевания, возможно, зависит от количества выделяемого секрета. Отягощающим фактором являются погодные условия.

Заболевания может охватить до 10 % поголовья молодняка (Чекалова Т.М., Гутенева Т.В., Чекалов А.С., 1992).

Последние исследования «подмокания» у соболей показали, что у соболей с выраженными клиническими признаками заболевания, значительно уменьшен объем суточной мочи с выраженной протеинурией и альбуминурией и с повышенным содержанием креатинина. Необходимы дальнейшие исследования, направленные на определение роли патологии мочевыводящей системы в патогенезе заболевания «подмокание» у соболей (Соболев В.Е., Жданов С.И., 2013).

Вследствие подмокания возникают дефекты шкурки. По данным Куличкова Б.А. (1980) основными видами дефектности шкурок соболей является частичная депигментация волоса на брюшке – так называемое «подмокание» до 31,1 % шкурок.

Симптомы. В начале болезни обнаруживают, что волосяной покров в области живота и внутренней поверхности задних конечностей мокрый.

Позднее в указанных участках кожи отмечаются гиперемия, слабая отечность и повышение температуры. Эпидермис отторгается, и обнаруживаются мелкие мокнущие участки, которые иногда покрываются гнойным экссудатом. Звери худеют (Майоров А.И. и соавт., 2011). При движении перебирают задними конечностями и горбятся. Очень часто больные щенки бегают только на передних лапах, а задними, приподнятыми в воздухе, имитируют движение. В отдельные годы заболевает большое количество щенков. По данным Куличкова Б.А. (1980) подмокание больше распространяется среди самцов (64,2 – 73,9 %), чем среди самок (45,1 – 61,3 %). Болезнь продолжается обычно две недели. В отдельных хозяйствах, скорее всего при нарушениях в кормлении, опрелость нередко протекает тяжелее и дольше (Слугин В.С., 2004). Изучение динамики «подмокания»

показало, что уже в 2х месячном возрасте около половины молодняка может иметь характерные признаки подмокания. Больные чаще всего выздоравливают. Иногда лечение не приносит успеха.

1.3.4 Гипотрофия щенков Гипотрофия щенков - патологическое состояние, характеризующиеся нарушением обменных процессов, недоразвитостью органов и тканей и замедленным ростом и развитием организма (Берестов В.А., 1978, 2002, 2005;

Слугин В.С., 2004).

Этиология и патогенез. Гипотрофия у щенков может быть следствием плохого кормления самок во время беременности, скудной молочности матерей, скученного содержания щенков после отсадки, формирования неоднородных групп или переболевания зверей инфекционными или другими заболеваниями.

Тяжесть развивающихся при гипотрофии нарушений зависит от обеспеченности организма белком. Уменьшение его запасов сопровождается гипопротеиннемией (Берестов В.А., 1978). Заболевание сопровождается дистрофическими изменениями в тканях, нарушением секреторной и моторной функций желудочно-кишечного тракта, гипогликемией, анемией и другими изменениями, которые в конечном итоге обуславливают замедление или даже полное прекращение роста щенков, снижением их устойчивости к неблагополучным факторам внешней среды (Берестов В.А., 2002).

У гипотрофичных щенков снижены иммунобиологические защитные силы организма, в связи с чем среди них высокий процент заболеваемости и смертности (Владимиров А.В., 2002). Щенки-гипотрофики имеют меньшую в сравнении с нормально развивающимися ровесниками массу тела. Шерстный покров их взъерошен и лишен блеска, отмечается сухость кожи. Реакции на внешние раздражители притуплены. Видимые слизистые оболочки бледные.

На ранних этапах развития таких щенков легко различить в помете - они не насосаны, холодные, вялые, чаще всего погибают от простудных заболеваний или их «убирает» сама самка (Владимиров А.В., 2002).

Профилактика заключается в правильном кормлении беременных и лактирующих самок, своевременной отсадке части помета или всех щенков от маломолочных или больных самок; формирование групп из однородных по развитию щенков (Берестов А.В., 2002; Слугин В.С., 2004; Балакирев Н.А., Кузнецов Г.А., 2006).

1.3.5 Анемия Анемия - состояние, характеризующиеся нарушением деятельности органов кроветворения и уменьшением количества гемоглобина и эритроцитов в единице объема крови (Берестов В.А., 1978).

Наиболее часто у зверей встречается железодефицитная (алиментарная) анемия или белопухость. Она проявляется снижением уровня гемоглобина в крови и депигминтацией пуховых волос вследствие нарушения всасываемости органического железа при систематическом скармливании рыбы семейства тресковых (минтай, мерлуза, пикша, треска) (Берестов В.А., 1978; Тютюнник Н.Н., 2002; Слугин В.С., 2004). В этой рыбе в большом количестве содержится триметиламиноксид (ТМАО), который связывает железо в кормовой смеси и переводит его из двухвалентного в неусвояемое зверями трехвалентное (Ender F., Helgebostad A., 1968). В организме зверей, особенно молодняка, возникает дефицит железа: уровень гемоглобина в крови снижается до 10-12 г/%, создается угроза осветления окраски пуха (Берестов В.А., 2002, Слугин В.С., 2004). Дефицит железа угнетает пролиферацию лимфоцитов и нарушает фагоцитарную и бактерицидную функции нейтрофилов, а это клинически проявляется в виде склонности к инфекционным заболеваниям (Уразаева Д.Н., Дельцов А.А., Парасюк Л.П. и др., 2010). У больных зверей отмечают анемичность видимых слизистых оболочек, мякишей лап, носа.

У зверей теряется аппетит, они худеют, отстают в росте, у взрослых зверей нарушается репродуктивная функция, у беременных самок регистрируют потерю материнских инстинктов, рождение мертвых (вследствие гипоксии), анемичных и мелких щенков, часто с нарушенной функцией пищеварения (Берестов В.А., 1978).

Диагноз ставят на основании анализа рациона и исследования крови на гемоглобин.

Для полного исключения возможности возникновения анемии в рационы вводят препараты органического железа. По данным Тютюнника Н.Н. (2002) применение железопроизводных препаратов хлорофилла приводит к стимуляции кроветворных органов. По данным Минина М.С.

(2013) применение препарата «Биожелезо» самкам соболей способствовало повышению их продуктивности.

Несколько реже встречается В12 (фолиево)-дефицитная анемия (Жаров А.В., Слугин В.С., 1964; Берестов В.А., 1978, 1981, 2005).

Этот вид анемии развивается вследствие недостатка в организме антианемического фактора (витамина В12), необходимого для нормального созревания эритроцитов (Behem G., Dressler D., Kohler W. etal., 1992).

При дефиците витамина В12 и фолиевой кислоты возникают нарушения нормального процесса созревания клеток красного ряда костного мозга (Жаров А.В., 1964; Берестов В.А., 1978, 1981, 2005).

Контроль над состоянием процессов кроветворения осуществляют путм систематических гематологических исследований (Берестов В.А., 1981, 2005).

1.3.6 Стрижка, сечение и тклость волоса Стрижка волос (скусывание или жевание волос) – это временное проявление потребности у зверей скусывать собственные или соседнего зверя волосы в области шеи, спины и хвоста (ость и подпушь) (Слугин В.С., 2004). Иногда остаются не поврежденными только те места, которые сам зверь достать не может. Был случай 100 % поражения шкурковой продукции соболиной фермы одного зверосовхоза. Наблюдения за соболем показали, что скусанный мех он съедает (Русских А.П., Русских Н.А., 1967).

«Стрижка» заболевание полиэтиологической природы, выражающееся биохимическими нарушениями в организме зверей, следствием которых является изменение структуры сердцевинного слоя и повышенная ломкость волоса (Майоров А.И. и др., 2011).

Появление стрижки и сечения волос связывают со скармливанием большого количества костей, окисленных кормов и рыбы, а также дисбалансом аминокислот в кормосмеси, недостатком биотина, витаминов В2 и В6 и стрессами. По последним данным «стриженый волос» по сравнению с нормальным содержит меньше в 13 раз селена, в 5 раз никеля, в 2 раза магния, в 1,5 раза железа и кобальта (Староверова И.Н., 2009).

Гистологическими исследованиями внутренних органов установили, что у норок, пораженных «стрижкой», в любом возрасте ярко выражена гипофункция щитовидной железы (Майоров А.И. и др., 2011).

Сечение меха – это нарушение мехообразования, заключающиеся в ломкости остевого волоса и значительном снижении качества опушения.

Сечение меха бывает у всех видов пушных зверей. Причины данного нарушения точно не установлены, предполагается, что дефекты формирования волоса связаны с недостатком серосодержащих аминокислот, витаминов группы В и микроэлементов S, Cu, Co, Mg (Берестов В.А., 1978;

Балакирев Н.А., Перельдик Д.Н., 2010). В результате недостаточной кератинизации волосяного стержня волосы теряют эластичность и обламываются. На отдельных участках тела – огузках, хвосте, боках, спине – остевой волос лишен кончика, не покрывает подпуши, от чего имеет недостаточную пышность и «ватный» вид. Других отклонений от нормы у зверей не наблюдается. Сеченность волосяного покрова - приглушенный дефект соболей, распространен больше у самок. Величина помета, сроки рождения и окраска волосяного покрова не влияют на появление сечения (Уткин Л.Г. с соат., 1980).

Для профилактики сечения меха в период закладывания зимнего волоса (июль – ноябрь) звери должны получать в достаточном количестве все необходимые для нормального формирования меха питательные вещества и микроэлементы. Введение в рацион молодым зверям иммуномодуляторов способствует повышению товарных и теплозащитных свойств шкурок (Азарова Э.Б., 1994, 2000). Не допустимы перебои в кормлении, которые могут привести к нарушению образования волоса и его ломкости. В то же время нельзя и перекармливать зверей, поскольку это ведет к преждевременному созреванию кроющего волоса и быстрому лишению его прочности (Берестов В.А., 1978; Слугин В.С., 2004).

1.3.7 Стрессы Стресс – это общий адаптационный синдром, который выражается в активации ведущего эндокринного механизма: системы гипоталамус – передняя доля гипофиза – кора надпочечников, неспецифической клеточной защиты организма, а также изменении высокоспециализированных клеток организма – эритроцитов (Селье Г., 1960).

В связи с тем, что процесс одомашнивания хищных пушных зверей продолжается всего несколько десятков лет, они по большинству физиологических показателей и поведению весьма незначительно отличаются от своих дикий предков.

В промышленном звероводстве довольно часто возникает несоответствие между биологической природой организма, его физиологическими возможностями и окружающей средой, то есть возникает стресс (Маркушин П.В., 1985). Стрессы в звероводстве возникают в период отъема молодняка от самок, перегруппировки, бонитировки, татуировки, вакцинации, взятия крови (Берестов В.А., 2002, Слугин В.С., 2004). Особо ощутимый ущерб бывает во время массового щенения на ферме по причине различных стрессовых факторов (шум, незнакомые люди, неспокойное поведение слаборожденного молодняка, задержка корма) самки загрызают или "затаскивают" до смерти своих щенков (Трапезов О.В., 1997). Также изза стресса имеют место случаи каннибализма у щенков, отсаженных от самок целыми пометами (Берестов В.А., 2002; Слугин В.С., 2004). По данным Пшеничниковой М.Г. (2000) чрезмерные физические и психоэмоциональные нагрузки увеличивают частоту стрессорных ситуаций, способствуют переходу адаптационных реакций в повреждающие. Результатом этого является угнетение гипофизарной-адренокортико-половой системы и снижение резистентности организма. У соболей стрессоры вызывают припадки, которые часто заканчиваются гибелью зверей (Трубецкой Г.В., Слугин В.С., Уткин Л.Г., 1977).

Значительную часть зверопоголовья может охватить хроническая стрессорная болезнь - самопогрызание. Самопогрызание или аутоагрессия проявляется нервным возбуждением, во время которого больной зверь погрызает определенные участки своего тела (Слугин В.С., 2004). В числе стрессоров, обусловливающих самопогрызание у пушных зверей, выявлены следующие: рассадка отъемных щенков по одному в клетку (изоляция или гибель напарника), а также вакцинация, бонитировки, взвешивание, выставки, транспортировка, колебание атмосферного давления и температуры воздуха, шум, нарушение режима кормления, неполноценность рациона и т.д. (Балакирев Н.А., Кузнецов Г.А., 2006). Чаще болеют легко возбудимые особи. Вначале у больных повышается возбудимость и снижается аппетит. Приступы возбуждения длятся несколько секунд, или минут, затем больной зверь откусывает волосы с кончика хвоста, оголяя его.

Иногда этим и ограничивается проявление стресса. Во время сильного возбуждения зверь разгрызает себе ткани в области кончика или корня хвоста, ануса, коленного сустава, лап, иногда живота. Постепенно животное может отгрызть себе весь хвост, лапу, что представляет угрозу гибели от кровотечения или нагноения раны. Приступы самопогрызания повторяются через различные промежутки времени, чаще через 15 - 21 день (Паранич В.В., 1984). Для профилактики самопогрызания не допускают одиночного содержания щенков пушных зверей в клетках с момента их отъема от матерей. Ограничивают проведение мероприятий, связанных с ловлей зверей, нарушением распорядка дня, не допускают посторонних на фермы, следят за правильностью кормления и содержания животных. Помогает жсткая выбраковка больных зверей (Берестов В.А., 2002; Слугин В.С., 2004).

Однако в условиях современного звероводства невозможно добиться полного исключения стрессовых факторов, т.к. любое зооветмероприятие связано с ловлей зверей. Ранее для профилактики стресса применяли транквилизаторы (Любашенко С.Я., Грабовский А.В., 1973; Трубецкой Г.В., Слугин В.С., Уткин Л.Г., 1977; Берестов В.А., 1982; Набиев Ф.Г., 1992).

Сегодня имеются большие перспективы по применению различных иммуномодуляторов с адаптогенными свойствами для коррекции реакции организма на стресс и укрепления естественной резистентности зверей.

1.4 Иммунодефициты и их диагностика Иммунодефицит - это врожденная или приобретенная недостаточность механизмов специфического иммунитета (Т- и В-лимфоцитов) и связанных с ними неспецифических факторов защиты (моноцитов, макрофагов, комплимента) (Воронин Е.С. с соавт., 2002). Возможны иммунодефициты отдельных специфических и неспецифических факторов защиты или их комбинации. Первичные (врожднные) иммунодефициты возникают в результате генетических нарушений в развитии и созревании клеток иммунной системы (Галактионов В.Г., 1995).

В 1977 году Всемирной организацией здравоохранения все врожденные иммунодефициты были разделены на три группы:

Комбинированные иммунодефициты с нарушением клеточных и 1.

гуморальных форм реагирования, т.е. Т- и В-звеньев иммунитета.

Иммунодефициты с преимущественным нарушением клеточного 2.

иммунитета, т.е. Т- клеточного звена иммунитета.

Иммунодефициты с нарушением продукции антител, т.е. Вклеточного звена иммунитета.

Первичные иммунодефициты можно заподозрить при многократных и хронических заболеваниях, возвратных инфекциях у молодых животных, болезнях вызываемых необычными микроорганизмами. На них указывает неэффективность стандартной антимикробной терапии; персистентный лейкоцитоз или гипергаммаглобулинемия; отсутствие иммунного ответа на вакцинацию; аутоиммунные реакции или аллергия (Федоров Ю.Н., 2013).

Вторичные (приобретнные) иммунодефициты по их этиологии можно разделить на две группы: физиологические и патологические.

Физиологические иммунодефициты отмечаются в период новорожденности, беременности и старости, в период роста и высокой продуктивности. Среди патологических иммунодефицитов различают неинфекционные (вследствие нарушения кормления, особенно при белковом голодании, содержания, стресса, применения медикаментов) и инфекционные - вызванные воздействием вирусов, бактерий и паразитов.

Алиментарные иммунодефициты возникают при недостаточном содержании белка в рационе, несбалансированности по аминокислотам, при хронических поли, гипо- и авитаминозах, при этом резко угнетаются функции врожденного и адаптивного иммунитета и как следствие снижается сопротивляемость организма животных к инфекционным заболеваниям (Плященко С.И., Сидоров В.Т., 1979; Плященко С.И., 1991; Предыбайло Н.Д., 1991).

Стрессовые иммунодефициты вызываются длительным воздействием на организм стрессовых факторов (Плященко С.И., Сидоров В.Т., 1987;

Никитченко И.Н., Плященко С.И., Зенков А.С., 1998).

Под действием стресса повышается уровень кортикостероидов в крови и как следствие повышает чувствительность организма к инфекциям, подавляется воспалительный ответ на введение микробов, микробы диссеминируют по организму и усиленно размножаются, активируются латентные инфекции (Манько В.М., Девришов Д.А., 2011).

Медикаментозные иммунодефициты вызываются лекарственными средствами, в наибольшей степени кортикостероидами и антибиотиками.

При диагностике иммунодефицитов используют два основных показателя: клиническое состояние особи и состояние ее иммунного статуса, т.е. количественных и функциональных показателей активности системы иммунитета (Манько В.М., Девришов А.С., 2011).

В медицине используется двух уровневая система оценки иммунного статуса.

Первый уровень нацелен на выявление звеньев системы иммунитета с недостаточностью их количественных или функциональных параметров:

Определяемые параметры включают:

Определение общей численности лимфоцитов в периферической 1.

крови.

Определение числа Т- и В-лимфоцитов в периферической крови.

2.

Определение функциональной активности Т- и В-лимфоцитов 3.

(реакция на Т- и В- клеточные митогены).

Определение уровня иммуноглобулинов классов jgM, jgG, jgAв 4.

сыворотке крови.

Характеристика фагоцитарной активности лейкоцитов в 5.

периферической крови.

Тесты второго уровня аналитические, нацелены на уточнение локализации иммунодефицитов.

В ветеринарии диагностика иммунодефицитов направлена на качественную и количественную оценку звеньев иммунной системы (количественное определение иммуноглобулинов, антительный ответ на вакцинные антигены, способность лимфоцитов отвечать на митогены или специфические антигены, оценка функции нейтрофилов (Федоров Ю.Н., 2013).

Наличие иммунодефицитов различной степени выраженности и заболеваний, ассоциированных с функционированием системы иммунитета, предполагает их лечение с помощью специализированных лекарственных средств – иммуномодуляторов (Манько В.М., Девришов Д.А., 2011).

1.5 Иммуномодулирующая профилактика и терапия в звероводстве Расстройство иммунного статуса серьезно осложняет патогенез основного патологического процесса, его обнаружение и устранение, затрудняет работу с первичным заболеванием с помощью традиционных лекарственных препаратов (Земсков А.М., 1994). Проблема восстановления иммунологических нарушений с использованием иммуномодулирующих препаратов в последнее время является актуальной, поскольку большинство хронических, соматических, инфекционных болезней у животных сопровождается вторичной иммунологической недостаточностью. Любая патология является причиной или следствием иммунологических нарушений (Mulcahy G., Quinn P.J., 1986; Плященко С.И., 1991; Фдоров Ю.Н., 1996, 2005; Манько В.М., Девришов Д.А., 2011).

Различают четыре основных вида иммунотропных воздействий (Хаитов Р.М., Пинегин Б.В., 1996):

1. Иммуномодулирующее - иммунотропные влияния вызывают эффект возвращения из любого положения к нормальному уровню функционирования иммунной системы. Т.е. иммуномодуляторы обладают способностью изменять иммунную реактивность организма, повышая сниженные и понижая повышенные показатели иммунного статуса в нормальных пределах (Хаитов Р.М., 2005).

2. Иммунокоректирующее - исправляет дефекты функционирования иммунной системы при вторичных иммунодефицитных состояниях.

Иммунокорректоры нормализуют конкретное нарушенное звено иммунной системы (Т-клеточный иммунитет, фагоцитоз, комплемент).

3. Иммуностимулирующее - вызывает повышение активности как поврежденных - депрессированных, так и не поврежденных звеньев иммунной системы.

4. Иммунодепрессивное - угнетает активность различных звеньев иммунной системы.

Из всех видов позитивных иммунотропных воздействий наиболее оптимальным является иммуномодулирующие - "золотой стандарт" эффектов влияния на иммунную систему (Володин Н.Н., 2002).

Для иммуномодулирующей профилактики и терапии возможно использование как специфических, так и неспецифических иммуномодуляторов.

Среди неспецифических иммуномодуляторов по происхождению различают три основных класса иммуномодуляторов (Воронин Е.С.

с соавт., 2002):

1 - иммуномодуляторы эндогенного происхождения (пептиды тимуса, костного мозга, селезенки, цитокины) обеспечивающие физиологические параметры гомеостаза организма животных;

2 - иммуномодуляторы экзогенного природного происхождения (препараты микробного и растительного происхождения);

иммуномодуляторы экзогенные синтетические (аналоги 3 нуклеиновых кислот, гормоны, левамизол, дибазол, полиоксидоний).

Некоторые иммуномодуляторы могут влиять на специфические и неспецифические звенья иммунной системы. Прежде всего они активизируют первую линию защиты: нейтрофилы, макрофаги, эндотелиальные клетки, завершается иммунный ответ активацией Т- и Влимфоцитов и клеток иммунологической памяти (Федоров Ю.Н. и др., 2001;

Игнатов П.Е., 2002; Федоров Ю.Н., 2005).

Существует и несколько отличная классификация иммунотропных препаратов по преимущественному влиянию на факторы защиты (Хаитов

Р.М., Пинегин Б.В., 2005):

1. Иммунотропные препараты центральной реакции иммунитета:

а) препараты тимуса (Т-активины, птиалин),

б) иммуномодуляторы костномозгового происхождения (миелоцит, Вактивин),

в) препараты селезенки (Спленин).

2. Кортикостероиды;

3.Вакцины, препараты бактериального происхождения, иммуноглобулины;

4. Цитокины: интерфероны, интерлейкины, фактор некроза опухолей;

5. Иммуносупрессоры;

Неспецифические стимуляторы иммунного ответа (дибазол, 6.

левомизол, витамины, микроэлементы);

7. Растительные иммуномодуляторы.

Главным обоснованием для назначения иммунокоррегирующих средств является клиническая картина, характеризующаяся наличием хронических, вялотекущих и трудно поддающихся лечению инфекционных процессов, а так же результаты иммунологического мониторинга (Федоров Ю.Н., 2005, 2013).

Иммуномодуляторы применяют в виде монотерапии и в комплексе с другими препаратами. Выбор иммуномодулятора зависит от выявленного иммунологического дефицита. При дефекте клеточного звена иммунитета применяют Полиоксидоний, Т-активин, Иммунофан, Риботан, Натрия нуклеинат, Гамавит. Заместительная терапия гуморального звена иммунитета включает препараты иммуноглобулинов. Патологию синтеза альфа- и гаммаинтерферонов устраняют с помощью индукторов интерферона, природных и рекомбинантных интерферонов.

С иммунобиологических позиций состояние здоровья животных в настоящее время характеризуется снижением иммунологической реактивности и, как следствие, повышением заболеваемости в результате воздействия возбудителями инфекционных болезней и условно патогенными микроорганизмами (Воронин Е.С., 2002). Сегодня целесообразно применять иммуномодуляторы, которые не только оптимизируют работу иммунной системы, но и оказывают комплексное благоприятное воздействие на организм. Они могут стимулировать рост и развитие молодняка, проявлять адьювантную, антивирусную, противовоспалительную активность, детоксикационное действие, нормализовать состав крови (Санин А.В. и др., 2012).

Применение таких иммуномодуляторов особенно актуально при выращивании зверей в условиях промышленного звероводства, что сопряжено с влиянием многих неблагоприятных факторов: технологические стрессы (отсадка от матерей, вакцинация, бонитировка), алиментарные иммунодефициты (не сбалансированность рационов по белку, витаминам, макро- и микроэлементам), адаптивные стрессы (близость людей, жара, холод).

Для профилактики и лечения иммунодефицитных состояний у пушных зверей в разные годы с различной эффективностью использовались различные препараты растительного происхождения элеутерококк, женьшень, хвоя.

Элеутерококк (отвары корней) впервые применялся в зверосовхозах приморского края с 1958 - 1968 годов Юдиным А.М. (1973) (Приморская научно- исследовательская ветеринарная станция). Первые эксперименты показали эффективность его применения в норководстве (увеличение выхода, жизнеспособности и развития щенков). В настоящие время элеутерококк используют в виде экстракта. Он оказывает на организм антистрессорное действие, способствуя тем самым нормализации иммунологических реакций, он способен нормализовать показатели клеточного и гуморального иммунитета, системы неспецифической защиты, стимулировать продукцию эндогенного интерферона.

По данным Чекаловой Т.М. с соавт (2010) хорошо зарекомендовал себя в звероводстве препарат женьшеня - "Рибав". Это спиртовой экстракт из биомассы микроскопических грибов, полученных из корней женьшеня, содержит биологически активные вещества. Препараты женьшеня усиливают активность Т-киллеров и антитетелообразующих клеток в селезенке, стимулирует синтез антител.

Широко изучались возможности применения хвои в звероводческих хозяйствах Дальнего Востока (Исаева Т.И., Рубис А.В., 1976) и Карелии (Мельник Э.Л., Петров Г.Г., 1977; Берестов В.А. с соавт., 1982). Ценность хвои не исчерпывается содержанием в ней витаминов, макро- и микроэлементов. Важным является наличие в хвои фитонцидов. Фитонциды считаются растительными антибиотиками; они обладают разносторонним иммунотропным действием, оказывая влияния на фагоциты, стимулируют выработку интерферонов. По данным Берестова В.А. (1982) добавление хвои в корм зверям оказывало положительное влияние на сохранность щенков, увеличение живой массы, улучшение работы самцов и увеличение размеров и качества шкурок.

В научно-исследовательском институте пушного звероводства и кролиководства имени В.А. Афанасьева разработали биологически активный препарат из хвойной зелени МИК БАК. Действующим началом его является комплекс: хлорофилл, каротин, витамины А, Е, С, группы В, биофлавоноиды (Балакирев Н.А., 1997; Квартникова Е.Г. с соавт., 1997).

По данным Слободяника В.И. и Жукова С.П. (2003, 2004) хорошо зарекомендовал себя в кролиководстве Фоспренил на основе фосфорилированных полипренолов хвои, которые можно отнести к иммуномодуляторам экзогенного растительного происхождения (Деева А.В., Мехдиханов Г.Г., Соколов В.Д. и др., 2008).

По результатам исследований Ростроса П.А. (2008) иммуномодуляторы Фоспренил и Гамавит (содержащий плаценту денатурированную эмульгированную, нуклеинат натрия и набор аминокислот, витаминов, солей) способствуют повышению иммунной реактивности и продуктивности норок. Нуклеинат натрия в составе Гамавита относится к группе экзогенных иммуномодуляторов микробного происхождения (Деева А.В. и др., 2008;

Санин А.В. и др., 2012).

С успехом используются в звероводстве и другие иммуномодуляторы микробного происхождения – пробиотики (лакто- и бифидобактерии и ацидофильная палочка). Применяют в виде бифидум-бактерина сухого, Бактерина SL, Лактобифодола, сухой ацидофильной закваски, ветом 1.1 (Bacilussubtilis). Они повышают активность фагоцитов, естественных киллеров, Т- и В- лимфоцитов, увеличивают секрецию цитокинов. Пипа О.А.

и Снытко А.И. (1996) эффективно использовали на норках норстимулин.

Норстимулин – иммуномодулятор, состоящий из Т-активина на биологической среде (аминокислоты, витамины). Предназначен для повышения резистентности организма зверей (Майорова О.А., 2000).

Владимиров В.А. (2002) рекомендует использовать в звероводстве при гипотрофии щенков иммуномодулятор эндогенного происхождения (тимолин-экстракт из вилочковой железы крупного рогатого скота) и тимоген (синтетический аналог тимолина), которые регулируют количество и соотношение Т- и В- лимфоцитов и их популяций, стимулируют реакции клеточного иммунитета, усиливают фагоцитоз.

При использовании в звероводстве иммуномодуляторов надо учитывать иммунный статус зверей в зависимости от их физиологического состояния: физиологический покой, гон, щенение, лактация, интенсивный рост, линька, а также годовую периодичность обмена веществ.

1.6 Особенности неспецифического иммунитета у зверей Особенности неспецифического иммунитета у пушных зверей связаны с их физиологическими и биологическими особенностями.

В первую очередь сюда относится четко сохранившееся в условиях клеточного содержания сезонность ритмов размножения, линьки, обмена веществ. Основным внешним синхронизатором внутреннего биологического ритма у зверей является длина светового дня, поскольку действие этого фактора было наиболее стабильным в течение всего периода эволюции (Берестов В.А., 2005).

Вопросами изучения неспецифического иммунитета у пушных зверей занималась лаборатория экологической физиологии Карельского научного центра РАН под руководством профессора Берестова В.А. Неспецифический иммунитет – совокупность механизмов на неспецифической основе удаление из организма чужеродной генетической информации или ликвидацию последствий е воздействия. В первую очередь таким механизмом является неспецифическая защитная система крови, включающая клеточные (фагоцитоз) и гуморальные факторы. Среди гуморальных факторов у зверей наиболее изучены лизоцим, бета-лизины, комплемент. Все они обеспечивают устойчивость организма к неблагоприятным биотическим и абиотическим воздействиям внешней среды и являются критериями оценки резистентности организма.

Берестовым В.А., Малининой Г.М. (1991), Мельник Э.Л. (1977) было установлено, что возрастная динамика лизоцима, бета-лизинов и комплимента, отражает, свойственным пушным зверям уровень обмена, в различные периоды роста, развития и становления морфофункциональных систем. Их активность по своим максимумам соответствует самым ответственным периодам онтогенеза. Высокий уровень лизоцима, бетализинов и комплимента в первые месяцы жизни зверей был сопряжен с высокой интенсивностью обмена веществ в период интенсивного роста.

С возрастом (4 - 5 месяцев) активность факторов гуморального звена иммунитета снижается это совпадает с падением интенсивности обмена веществ и замедлением темпов роста у зверей. Одновременно в этот период у зверей наблюдается высокая фагоцитарная активность лейкоцитов и завершенность фагоцитоза. По всей вероятности в данном случае ведущую роль в неспецифической защите организма принимают на себя клеточные факторы неспецифического иммунитета (Берестов В.А., Узенбаева Л.Б., 1983).

У взрослых зверей активность гуморальных факторов не постоянна и изменяется в зависимости от времени года. Характер этих изменений тесно связан с годовыми перестройками обмена, периодами размножения, линьки, формирования зимнего и летнего опушения и отражает всю совокупность преобразований, происходящих в организме зверей в ходе их сезонных адаптаций.

По показателям фагоцитоза и гуморальным факторам неспецифического иммунитета можно судить об иммунном статусе организма при различных физиологических и патологических состояниях.

Определение активности лизоцима является хорошим прогностическим тестом. В острой фазе болезни активность его обычно возрастает, при тяжелом течение снижается. У пушных зверей активность лизоцима повышается при гипотрофии, лактационном истощение, вирусном плазмоцитозе, токсокарозе, а снижается при пастереллезе, дифиллоботриозе, анемии (Берестов В.А., 1976, 1978, 2005).

Показатели фагоцитоза (фагоцитарная активность, фагоцитарное число, завершенность фагоцитоза) являются чувствительным индикатором состояния организма. При патологии зарегистрированы отклонения их от нормальных величин. Снижение активности фагоцитоза свидетельствует о падении защитных сил организма (анемия, голодание, авитаминозы) и необходимости принятие мер по их активации (Берестов В.А., 1976, 1981, 2005).

Иммунологические факторы неспецифического иммунитета являются хорошими критериями состояния организма пушных зверей при клеточном разведение. Отрицательные воздействия - погрешности в кормление и содержание, заболевания любой этиологии - вызывают отклонения от их нормы, задолго до появления клинических признаков и падежа зверей (Берестов В.А., 2005).

Перспективным является выбраковка потенциально больных и слабых зверей по результатам исследования факторов неспецифического иммунитета, с целью оздоровления племенного стада (Берестов В.А., 1981, 2005; Берестов В.А., Малинина Г.М., 1991).

2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Работа выполнена в период с2011 по2013 год на кафедре ветеринарной вирусологии им. В.Н. Сюрина ФГБОУ ВПО МГАВМиБ и на соболиной ферме ОАО «Племенной зверосовхоз «Салтыковский» Московской области, который является узкоспециализированным звероводческим хозяйством. В зверосовхозе разводят соболя (10163 головы), норку (14756 головы), лису (952 головы) на 01.01.2013. Общее поголовье соболей, использованное в работе - 3482 головы породы Салтыковская-1. Из них были составлены опытные и контрольные группы соболей по принципу аналогов.

Количество зверей в опытных и контрольных группах:

1. 2011 год – 2 опытные группы по 50 самок и 100 щенков, 2 контрольные группы по 50 самок и по 100 щенков, всего 600 голов,

2. 2012 год – опытная группа самок соболей – 100 голов, самцов – 30 голов, молодняк 2 опытные группы по 100 голов; контрольная группа самок соболей – 100 голов, 30 голов самцов, контрольная группа молодняка – 100 голов, всего 560 голов;

3. 2013 год – опытная группа отделения №4: основные самки – 278 голов, однолетки самки и самцы – 100 голов, взрослые самцы – 75 голов, молодняк – 784 головы; контрольная группа отделение №2: самки основного стада - 278 голов, самцы – 77 голов, однолетки самки и самцы – 108 голов, молодняк – 622 голов, всего - 2322.

Научно-хозяйственные опыты (НХО) проводили в соответствии с общепринятыми в звероводстве методиками (Балакирев Н.А., Юдин В.К., 1994). Во всех опытах соболя получали общехозяйственный рацион (ОР), согласно рекомендуемым нормам (Перельдик Н.Ш., Милованов Л.В., Ерин А.Т., 1981, 1987). Контрольная группа соболей получали ОР без добавления к нему иммуномодуляторов (ИМД), а опытная группа с добавлением Фоспренила и(или) Гамавит в разных дозах в зависимости от опыта.

–  –  –

Дозы препаратов были установлены на основании предварительных испытаний на соболях и методических рекомендаций Применение иммуномодуляторов Фоспренил и Гамавит на норках в звероводстве (Ростроса П.А., 2008).

При сравнительном изучении влияния Фоспренила и Гамавита опыт был поставлен на самках соболей в период лактации, поэтому учитывались только результаты влияния препаратов на сохранность подсосных щенков.

Группы молодняка соболей в научно-хозяйственных опытах формировали после отсадки от матерей по методу пар аналогов, с учетом средней живой массы и возраста. В июле – июне молодняк содержался парами (самка и самец), а с первого августа рассаживался по одному. В хозяйстве применяется двух разовое кормление зверей основного стада с конца февраля до гона, молодняка до рассадки по одному. Готовую кормосмесь раздавали вручную на столик или сетку выгула в зависимости от технологического периода. Испытуемые препарат вносили в готовую кормосмесь, предварительно растворяя рассчитанную дозу препарата в о,5 литра воды, и тщательно перемешивая с кормом непосредственно перед утренним кормлением соболей. Применение препаратов осуществляли согласно приведенной схеме (таблица 1).

В работе были использованы препараты ЗАО «Микро-плюс» и ООО «Гамаветфарм»:

Фоспренил – 0,4-%-ный водный раствор фосфатов полипренолов, получаемых из хвои. Применяют для неспецифической профилактики вирусных заболеваний, снижения заболеваемости молодняка и взрослого поголовья, повышения титров поствакцинальных антител и снижения частоты поствакцинальных осложнений, увеличения привесов и других видов продуктивности, сокращения затрат корма на единицу продукции, при лечении вирусных заболеваний для повышения эффективности и сокращения времени лечения (в сочетании со схемой стандартной терапии).

Гамавит – комплексный физиологически сбалансированный водный раствор, содержащий плаценту денатурированную эмульгированную, нуклеинат натрия и набор аминокислот, витаминов и солей. Биогенный стимулятор, адаптоген, иммуномодулятор, оптимизирует метаболизм.

Применяют для повышения устойчивости к воздействию неблагоприятных и стрессовых факторов, увеличения привесов, повышения эффективности и сокращения времени лечения заболеваний (в сочетании со стандартной схемой терапии), снижения интоксикации, ослабленным особям. При интенсификации воспроизводства – для сокращения и синхронизации сроков прихода в охоту, повышения оплодотворяемости, снижения частоты неблагополучных родов, увеличение выхода молодняка.

Рисунок 1. Препарат Фоспренил Рисунок 2.

Препарат Гамавит

В этой работе использовались следующие методы исследований:

1) Клинические - проводили клинический осмотр и наблюдение соболей родительского стада в периоды беременности, щенения, лактации, отсадки щенков от матерей, гона (т.е. с февраля по август – 7 месяцев), у молодняка от рождения до убоя на мех или перевода в племя с апреля по октябрь – 7 месяцев). Учитывали общее физиологическое состояние, активность, поведенческие реакции, поедаемость корма, контроль за дефекацией, исследование фекалий, состояние кожных покровов и слизистых оболочек, учитывали заболеваемость и отход животных, проводили патологоанатомическое вскрытие.

Гематологические определяли количество эритроцитов и 2) лейкоцитов, среднее содержание и концентрацию гемоглобина в эритроцитах. Исследования проводили на гематологическом анализаторе ВС 2800 Vet.

3) Биохимические – определяли концентрацию общего белка, альбумина, мочевины, креатинина, холестерола, активность ферментов крови

– аланинаминотрансферазы (АлАТ), аспартатаминотрансферазы (АсАТ), на автоматическом биохимическом анализаторе RAL, TECNICA PARAEL LABORATORIO, модель Clima MC-15.

4) Иммунологические определение фагоцитарной активности нейтрофилов крови (ФАН),

- определение количества Т- и В- лимфоцитов, определение бактерицидной активности сыворотки крови (БАСК),

- определение лизоцимной активности сыворотки крови (ЛАСК) по общепринятым методикам: Емельяненко П.А., 1980, 1987; Девришов Д.А., Печникова Г.Н., Жарова Т.П. и др., 2009).

5) Серологические - определение уровня титров поствакцинальных антител против антигенов вируса чумы плотоядных в составе вакцины «Бионор D» методами реакции нейтрализации (РН).

Кровь для морфологических и биохимических анализов брали из пальца лапки, кончика хвоста или из сердца перед убоем.

6) Зоотехнические – рассчитывали (выход щенков на плановую самку, плодовитость, отход щенков до и после регистрации, взвешивание щенков, определение размера, качества шкурок). После убоя зверей совместно с ветеринарными специалистами хозяйства проводили патологоанатомическое вскрытие убитых животных по 10 голов из каждой группы. Убитых животных метили цветными нитками, продевая их через носовую перегородку и отправляли на съемку шкурок. На каждом этапе работы совместно с товароведом проводили оценку шкурок, полученных от контрольных и опытных групп животных после первичной обработки по ГОСТу-27571-87. Определяли цвет, размер и группу пороков. По итогам сортировки устанавливали зачет по качеству. Определяли густоту волосяного

–  –  –

Рисунок 3. Анализатор ВС 2800 Vet1

В анализаторе BС-2800 Vet используются 2 принципа измерения:

Для определения WBC (лейкоциты), RBC (эритроциты) и PLT 1.

(тромбоциты);

Колометрический метод для определения HGB(гемоглобин).

2.

2.2. Биохимические исследования сыворотки крови на автоматическом биохимическом анализаторе Рисунок 4. Биохимический анализатор RAL, TECNICA PARAEL LABORATORIO модель Clima MC-15 Анализатор предназначен для одновременного измерения 15 проб по одному из параметров (активность АсАТ, АлАТ, холестерол и т.д.) или измерения одной пробы по 15 параметрам. Для определения каждого из параметров применяется специфический набор реагентов, который взаимодействует с исследуемыми компонентами сыворотки изменяя оптическую плотность пробы. Скорость изменения плотности пробы измеряется фотометрически.

2.3. Методика определения фагоцитарной активности лейкоцитов крови по Берман В.М. и Славской Е.М. (1968) в модификации Емельяненко П.А.

Принцип метода: метод основан на визуальном учте числа бактерий, захваченных (захватывающая способность) или переваренных (переваривающая способность) нейтрофилами и моноцитами крови животных в процессе совместного выдерживания жизнеспособных эшерихий и лейкоцитов в пробирке или не поверхности питательного агара.

2.4. Методика определения количества лимфоцитов и разделение их на Т- и В-популяции с использованием видовых антииммуноглобулиновых сывороток Для разделения лимфоцитов на субпопуляции используют метод, основанный на свойстве В-лимфоцитов экспрессировать на поверхности своей мембраны антигены к сывороточным иммуноглобулинам.

Для разделения лимфоцитов на Т- и В-лимфоциты используют чашки Петри, предварительно обработанные смесью специфических антисывороток к иммуноглобулинам (lgM, lgG), куда наслаивают полученную суспензию лимфоцитов, равномерно распределяя ее по всей поверхности. Инкубируют при комнатной температуре в течение 40 минут. Потом осторожно смывают неприлипшие к поверхности чашки «плавающие» клетки (Т-лимфоциты и Тнолевые). В-лимфоциты, обладающие поверхностными антигенами к иммуноглобулинам (lgM и lgG) и фиксированные таким образом на обработанной поверхности чашек Петри, смывают энергичным пипетированием с физиологическим раствором. Подсчет Т- и В-лимфоцитов осуществляют в камере Горяева аналогично подсчету лейкоцитов.

Полученные цифры соответствуют абсолютным значениям субпопуляций лимфоцитов (тыс/мкл).

2.5. Методика определения бактерицидной активности сыворотки крови (БАСК) Принцип метода. Метод основан на свойствах сыворотки крови оказывать бактерицидное и бактериостатическое действие на микроорганизмы.

Уровень бактерицидной активности характеризуется степенью задержки прироста биомассы тест-микроба в жидкой питательной среде под влиянием исследуемой сыворотки крови, выраженный в процентах.

2.6. Методика определения лизоцима в сыворотке крови (ЛАСК) Принцип метода. Метод основан на способности лизоцима растворять взвешенный в агаре ацетоновый порошок из клеточных оболочек Micrococcus Lysodeiktikus. Степень литической активности определяется путм измерения диаметра зоны лизиса вокруг лунки в агаре, в которую был внесн исследуемый материал.

Методика постановки реакции нейтрализации (РН) по 2.7.

общепринятой методике.

Принцип метода реакции нейтрализации состоит в том, что при взаимодействии антигена (вируса) с гомологичным антителом образуется комплекс антиген+антитело, в результате нейтрализуется инфекционная активность вируса. Индикатором свободного (не связавшегося с антителами) вируса является чувствительная к вирусу культура клеток (Белоусова Р.В. и др., 2006, 2007).

За титр антител сыворотки принимают наибольшее ее разведение, которое сдерживает развитие цитопатического действия (ЦПД) вируса. При этом контрольные культуры клеток должны быть без изменения.

2.8. Методика анализа кала Анализ кала проводили с применением набора реагентов «Клиника Кал», определяли цвет, запах, консистенцию, билирубин, стеркобилин, рН, удельный вес, белок. При микроскопическом анализе кала: выявляли не переваренные и полупереваренные мышечные волокна.

2.9. Методика определения густоты волосяного покрова по методу Каспарьянц С.А., Хлудеев К.Д., Кирилюк Б.И. (1986) Подготовку гистологических препаратов проводили по общепринятой методике с помощью специалистов ветеринарной лаборатории ГНУ Научноисследовательского института пушного звероводства и кролиководства им.

В.А. Афанасьева.

Определение первичных и вторичных волосяных фолликулов на горизонтальных гистологических срезах кожи соболей проводили с использованием светового микроскопа «Биомед». Подсчитывали количество первичных волосяных фолликулов и количество вторичных волосяных фолликулов, затем их общее количество, исследования проводили в десяти полях зрения микроскопа. Затем обрабатывали полученные данные для получения среднего статистического отклонения (M±m). С помощью коэффициентов рассчитывали количество волос на 1 см2 кожи.

3 РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1 Влияние препаратов Фоспренил и Гамавит на физиологическое состояние, сохранность и продуктивность молодняка соболей На первом этапе для оценки влияния препаратов Фоспренил и Гамавит (каждого в отдельности) был поставлен эксперимент на самках основного стада в период лактации и на молодняке соболей в период роста и формирования волосяного покрова.

Из самок соболей было сформировано две опытных группы по 50 голов. Одна опытная группа получала Фоспренил в дозе 0,05 мл/кг живой массы, другая Гамавит в дозе 0,1 мл/кг живой массы с кормом 1 раз в неделю, весь период лактации с апреля по июнь (45 – 50 дней). После отсадки щенков от этих самок были сформированы две опытные группы щенков по 100 голов в каждой. Одна опытная группа щенков получала с кормом Фоспренил в дозе 0,05 мл/кг живой массы другая опытная группа Гамавит по 0,1 мл/кг живой массы с кормом 1 раз в 14 дней (май-июнь) затем 1 раз в неделю с июля по октябрь (весь период роста и формирования волосяного покрова до убоя на шкурку).

Таблица 2. Результаты влияния Фоспренила и Гамавита на сохранность щенков в подсосный период

–  –  –

Анализ данных по заболеваемости и отходу молодняка показал что, в группе Фоспренила не было случаев заболевания молодняка опрелостью и гипотрофией, заболевания гастроэнтеритом было в 5 раз меньше, чем в контрольной группе.

В опытной группе Гамавита также не было заболевания гипотрофией, а случаев заболевания гастроэнтеритом и опрелостью было меньше в 1,8 и 1,4 раза, т.е. на заболеваемость и сохранность молодняка соболей положительно повлияли оба препарата, но в опыте с Фоспренилом – гибели щенков не было совсем, в опыте с Гамавитом отход щенков после регистрации составил 1 %.

В период роста и развития молодняка неоднократно производились исследования концентрации гемоглобина в крови. Результаты влияния Фоспренила и Гамавита на уровень гемоглобина представлены в таблице 4.

–  –  –

Рисунок 5. Влияние Фоспренила и Гамавита на уровень гемоглобина в крови соболей в возрасте 4, 5 и 6 месяцев Для оценки влияния препаратов Фоспренил и Гамавит на рост молодняка была измерена живая масса убойного молодняка в возрасте 6 месяцев.

Результаты представлены в таблице 5.

Таблица 5. Влияние Фоспренила и Гамавита на живую массу щенков (самцы) в возрасте 6 месяцев, г (М+m)

–  –  –

Живая масса, г. 1290±21,1 1390 ±19,6*** 1300±17,2 1460±16,7*** Прибавка веса в % относительно контрольной группы *** - Р0,999 Из данных приведнных в таблице 5 видно, что различия по живой массе самцов в конце опыта составили в группе Фоспренила 100 грамм (7 %), в группе Гамавита 160 грамм (12 %) (Р0,999), по сравнению с контрольными группами.

После убоя на шкурку, была проведена оценка размера и качества полученных шкурок от соболей опытных и контрольных групп. Данные по размеру и качеству шкурок представлены в рисунках 6, 7 и в таблице 6.

–  –  –

Рисунок 7. Процентное соотношение шкурок по группе пороков Как видно из приведенных в таблице 6 и рисунке 7 данных количество особо крупных шкурок в опытной группе Фоспренила составило 43,8 %, а в опытной группе Гамавита 82,6 %, а в контрольной группе в 25,3 %.

Анализ данных показал, что в опытных группах были шкурки лучшего качества по сравнению с контрольной группой, за счет увеличения шкурок с первой группой пороков (без дефектов) в опытной группе Фоспренила до 81,25 %, а в опытной группе Гамавита до 60,9 %, а также за счет уменьшения доли шкурок с третьей группой пороков в опытной группе Фоспренила на 9,4 %, в опытной группе Гамавита на 7 %. В опытных группах Фоспренила и Гамавита шкурок с четвертой группой пороков не было, а в контрольной группе такие шкурки составили 6 %, из них 3 % это шкурки с частичной депигментацией на чреве (последствия опрелости), а 3 % «стрижка волосяного покрова» (рис. 8).

Рисунок 8. Стрижка волосяного покрова у соболей Таким образом, на размер и качество шкурок повлияли оба препарата, но на размер лучше повлиял Гамавит, а на качество Фоспренил.

Зачет по качеству шкурок был достоверно выше (Р0,999) в опытной группе Гамавита на 5,3 %, в опытной группе Фоспренила на 8,6 % по сравнению с контрольной группой.

При патологоанатомическом вскрытии убойного молодняка видимых изменений внутренних органов не обнаружено.

Сравнение эффективности каждого из препаратов Фоспренил и

Гамавит показало следующее:

- На сохранность щенков в подсосный период (до регистрации) лучшее влияние оказал Фоспренил, в этой опытной группе сохранность выше на 0,9 %, по сравнению с группой Гамавита (2,8 % против 1,9 %).

- На сохранность молодняка соболей после регистрации лучшее влияние также оказал Фоспренил, увеличивая ее на 1% по сравнению с сохранностью опытной группы Гамавита (сохранность в опытной группе Фоспренила составила 100 %, а сохранность в группе Гамавита – 99 %, в контрольных группах сохранность 98 %).

- На уровень содержания гемоглобина в крови молодняка соболей, в период выращивания, оказали положительное влияние оба препарата. В опытных группах соболей в возрасте шести месяцев уровень гемоглобина был достоверно выше (Р0,999) в группе Фоспренила на 8 %, в группе Гамавита на 7 %, по сравнению с контрольными группами животных.

- На прирост живой массы молодняка к убою лучшее влияние оказал Гамавит. В этой опытной группе прирост живой массы был выше на 5 %, чем в опытной группе Фоспренила.

- На размер шкурок лучшее влияние оказал Гамавит, в этой группе крупных и особо крупных шкурок было больше на 10 % по сравнению с опытной группой Фоспренила.

- На качество шкурок лучше оказалось действие Фоспренила, шкурок без пороков в этой опытной группе было больше на 20 %, а процент зачета по качеству шкурок выше на 3,3%, по сравнению с опытной группой Гамавита.

Учитывая результаты сравнительного влияния Фоспренила и Гамавита на уровень гемоглобина в крови соболей, сохранность и продуктивность молодняка соболей на следующем этапе работы препараты Фоспренил и Гамавит применяли сочетано.

3.2 Испытание схемы сочетанного применения препаратов Фоспренил и Гамавит 3.2.1 Влияние препаратов Фоспренил и Гамавит (сочетано) на физиологическое состояние, иммунный статус и продуктивность самок соболей На втором этапе проводили испытание схемы сочетанного применения Фоспренила с Гамавитом на самках основного стада в период истинной беременности, лактации и гона в дозах Фоспренил 0,05 мл/кг, Гамавита 0,1 мл/кг живой массы.

Как видно из данных таблицы 7 в опытной группе ощенилось самок на 5 % больше, отход щенков до регистрации ниже на 1,1 %, чем в контрольной группе. За счет снижения числа пропустовавших самок и увеличения сохранности подсосного молодняка, выход молодняка на основную самку в опытной группе повысился на 0,4 щенка (Р95), что позволило от 100 самок в опытной группе получить на 38 щенков больше, чем в контрольной группе.

–  –  –

109,8 % 110 107,2 106,5 106 104,8

–  –  –

Рисунок 10. Прирост живой массы подсосных щенков опытной группы по сравнению с контрольной группой Из приведенных в таблице 8 и рисунке 10 данных видно что, живая масса щенков при рождении в опытной группе составила 31,2 г. против 29,1 г. (Р0,90), что больше, чем в контрольной группе на 2,1 г. (7,2%). На протяжении всей лактации щенки самок опытной группы превосходили по живой массе своих контрольных сверстников на 4,8 - 9,8 %. В возрасте 10 дней различие в живой массе щенков опытной и контрольной группы составило 9,8 % (Р0,95), а в возрасте 21 дня 6,5 % (Р0,90).

Учитывая результаты абсолютного прироста живой массы у щенков в первые 20 дней жизни (в опытной группе он выше на 6 % или 11,1 г.

(Р0,90), чем в контрольной группе), можно судить о положительном влиянии Фоспренила и Гамавита на молочность самок, так как в этот период щенки питаются только молоком матери.

Результаты влияния Фоспренила и Гамавита на биохимические и гематологические показатели крови самок соболей представлены в таблице 9.

–  –  –

По результатам гематологических исследований установили, что уровень гемоглобина выше на 6% в опытной группе соболей и составил 190 ± 2,8 г/л (P 0,95), а в контрольной группе 179,6±2,9 г/л. Количество эритроцитов достоверно выше на 6,5 % (P 0,99) у соболей опытной группы по сравнению с контролем. Т.е. Фоспренил и Гамавит положительно повлияли на эритро-, гемопоэз. Различия в лейкоцитарной формуле в опытной и контрольной группах не значительны и находится в пределах физиологической нормы.

Результаты влияния Фоспренила и Гамавита на иммунологические показатели представлены в таблицах 10, 11, 12.

–  –  –

Фагоцитарное число 1,41 ± 0,9 2,2 ± 0,6 Убитые бактерии, % 9,0 ± 8,8 25,0 ± 7,0 *P 0,95 Применение препаратов Фоспренил и Гамавит способствовало увеличению процента фагоцитоза в 3 раза (P 0,95); индекса фагоцитоза в 4,8 раза (P 0,90).

Из данных, приведенных в таблице 11, видно, что сочетанное применение Фоспренила и Гамавита оказало влияние на соотношение Т- и Влимфоцитов крови соболей, увеличивая в 1,5 раза абсолютное количество Тлимфоцитов (P 0,999) в опытной группе соболей, что свидетельствует об активизации клеточного иммунитета.

–  –  –

группе до 42,8 % в опытной группе, т.е. на 11,4 %; ЛАСК с 74,3 мкг/мл в контроле до 128,0 мкг/мл в опыте, т.е. в 1,7 раза (P 0,999).

Результаты иммунологического анализа крови самок соболей свидетельствуют об активации клеточных и гуморальных факторов иммунитета у опытных животных.

Все представленные иммунологические показатели (ФАН, БАСК, ЛАСК) в опытной группе самок выше, чем в контрольной, что коррелирует с показателем продуктивности самок и сохранности подсосных щенков.

3.2.2 Влияние препаратов Фоспренил и Гамавит (сочетано) на физиологическое состояние, иммунный статус и показатели продуктивности молодняка соболей Для оценки влияния препаратов Фоспренил и Гамавит на физиологическое состояние, иммунный статус, продуктивность и выбор дозы препаратов из отсаженного молодняка соболей было сформировано две опытные группы (по 100 голов).

Первая опытная группа получала сочетано препараты Фоспренил в дозе 0,05 мл/кг и Гамавит 0,1 мл/кг; вторая опытная группа получала эти же препараты в удвоенной дозе Фоспренил 0,1 мл/кг, Гамавит 0,2 мл/кг с кормом один раз в неделю с июня по октябрь (весь период выращивания до убоя на шкурку или перевода на племя). Из щенков полученных от контрольных самок сформирована контрольная группа щенков – 100 голов.

Для оценки влияния на заболеваемость и сохранность отсаженного молодняка соболей провели анализ данных из ветеринарных отчетов.

Анализируя результаты данных таблицы 13, установили, что применение препаратов Фоспренил и Гамавит сократило заболеваемость щенков соболей – гастроэнтеритом в 2 и 3 раза, опрелостью - в 2,4 раза, гипотрофией в 3,5 раза. Тяжесть заболевания и скорость излечения в опытных группах молодняка была легче и быстрее, чем в контрольной группе. В результате чего сохранность щенков после регистрации в первой опытной группе составила- 99 %, во второй опытной группе -100 %, а в контрольной группе – 98 %.

Таблица 13. Влияние сочетанного применения препаратов на заболеваемость и сохранность молодняка соболей

–  –  –

Для изучения влияния препаратов Фоспренил и Гамавит на физиологическое состояние проводили гематологические и биохимические исследования сыворотки крови молодняка соболей. Результаты исследований представлены в таблице 14.

Биохимические исследования (таблица 14) позволили установить, что содержание общего белка в сыворотке крови молодняка соболей выше в опытных группах по сравнению с контрольной на 8 – 9 % и составило 69,2±2,2 г/л и 70,0±2,4 г/л (P0,95) против 62,2 г/л, за счет повышения уровня альбуминов, что свидетельствует о положительном влиянии препаратов на белковый обмен. Активность трансаминаз в опытных группах ниже, чем в контрольной группе. Показатели АсАТ и АлАТ в первой опытной группе ниже в 1,3 раза (P0,90) по сравнению с контрольной группой. Показатель АсАТ во второй опытной группе ниже в 1,9 раза и составил 89,0 е/л (P0,95) против 174,0 е/л, показатель АлАТ ниже в 1,6 раза и составил 67,6±14,9 против 112,4±6,0 е/л. Снижение показателей трансаминаз (P0,95) свидетельствует об уменьшении токсической нагрузки на печень.

Таблица 14. Биохимические и гематологические показатели сыворотки крови молодняка самок соболей в возрасте 6 месяцев (M±m)

–  –  –

Применение препаратов Фоспренил и Гамавит способствовали повышению уровня гемоглобина в крови молодняка соболей. В первой опытной группе животных до 179,1 г/л, т.е. на 10 % (P0,99), во второй опытной группе до 181,0 г/л, т.е. на 11 % (P0,99) против контрольной группы 163,4 г/л.

Уровень гемоглобина является важным показателем физиологического состояния зверей. Снижение уровня гемоглобина приводит к белопухости и сказывается на качестве пушнины.

Сравнительный анализ лейкоцитарной формулы не выявил значительных различий между показателями второй опытной группы и контрольной группы молодняка соболей, все показатели находятся в пределах физиологической нормы.

Для изучения влияния препаратов Фоспренил и Гамавит на иммунный статус организма молодняка соболей проводили иммунологические исследования: определяли фагоцитарную активность нейтрофилов, бактерицидную и лизоцимную активность сыворотки крови.

–  –  –

группой. Число убитых бактерий достоверно выше (P 0,999) в опытных группах, по сравнению с контрольной группой (в 2,7 – 4 раза).

Препараты Фоспренил и Гамавит оказали положительное влияние на показатели БАСК и ЛАСК, увеличивая БАСК с 81,31 % в контрольной группе до 87,03 % и 87,98 % в опытных группах, т.е. на 6 % и 8 %; ЛАСК с 48,39 мкг/мл до 65,3 и 98,4 мкг/мл (P 0,90), т.е. в 1,4 и в 2 раза выше контрольной группы.

Таблица 16. Динамика живой массы молодняка соболей (самцы)

–  –  –

Рисунок 11. Влияние Фоспренила и Гамавита на прирост живой массы щенков Как видно из данных приведенных в таблицах 16, 17 и рисунке 11 молодняк опытных групп лучше рос на всем притяжении выращивания и в конце опытов различие по живой массе зверей контрольной и первой опытной группы составило по самкам 69,1 г. (7 %) (P 0,999) по самцам 79,0 г. (6 %) (P 0,99), во второй опытной группе по самкам 93,3 г. (9 %) (P 0,999) по самцам 109,3 г. (8 %) (P 0,99) в пользу опытных групп. Абсолютный прирост живой массы у самцов первой и второй опытных групп выше контрольной на 53,6 г. и 83,9 г. (P 0,95), у самок на 48,7 г. (P 0,99) и 68,0 г. (P 0,999). По результатам бонитировки оставлено на племя в первой опытной группе – 54 %, второй опытной группе – 59 %, в контрольной группе – 49 % молодняка, остальные убиты на шкурки.

Для изучения влияния препаратов Фоспренил и Гамавит на показатели продуктивности молодняка соболей изучали размер и качество шкурок убойного молодняка. Результаты представлены в таблице 18.

–  –  –

3% 13% 30% 54% Рисунок 12. Процентное соотношение шкурок контрольной группы по размеру

–  –  –

18% 26% 56% Рисунок 13. Процентное соотношение шкурок первой опытной группы по размеру

–  –  –

21% 21% 58% Рисунок 14. Процентное соотношение шкурок второй опытной группы по размеру Как видно из данных таблицы 18 доля шкурок первого (наиболее ценного) и второго цвета в опытных группах соболей была больше.

Интенсивность основной окраски соболей, наследуемый признак, но на окраску подпуши влияет уровень гемоглобина в крови. При его снижении возникает обесцвечивание подпуши и развивается «белопухость».

Анализ данных приведенных в таблице 18 и рисунков 12, 13, 14 видно, что в первой опытной группе шкурки особо крупные и крупные составили 74,1 %, во второй опытной группе – 79,3 %, а в контрольной только 66,7 %.

–  –  –

Рисунок 15. Процентное соотношение шкурок по группам пороков Анализ данных по качеству шкурок показал, что шкурки первой группы пороков (без дефектов) в первой опытной группе составили – 66,7 %, во второй опытной группе – 62,1 %, против контрольной группы 53,3 %, т.е.

шкурок без дефектов в опытных группах было больше на 13,4 % и 8,8 %.

Основным пороком на шкурках в опытных и контрольной группах из второй и третьей групп пороков была частичная депигментация волоса на череве (последствия «опрелости»). Шкурки из четвертой группы пороков в контрольной группе составили 3,3% (стрижка волосяного покрова).

–  –  –

Рисунок 17. Волосяные фолликулы контрольной группы Рисунок 18. Волосяные фолликулы первой опытной группы Рисунок 19. Волосяные фолликулы второй опытной группы По данным из таблицы 19 и рисунков 17, 18, 19 наиболее густоволосыми являются шкурки от соболей второй опытной группы (26,8 фолликулов в поле зрения микроскопа (P 0,95) или 14323 волос на 1 см2 кожи). На шкурках полученных от соболей первой опытной группы общее количество волосяных фолликулов в поле зрения микроскопа составила 26,0 (P 0,95), что соответствует 13896,0 волос на 1 см2 кожи. Наименее густоволосыми являются шкурки от соболей из контрольной группы (19,3 фолликула в поле зрения микроскопа или 12400 волос на 1 см2 кожи), т.е.

Фоспренил и Гамавит положительно повлияли на густоту волос соболей опытных групп. Увеличивая ее на 12 – 15 % по сравнению с контрольной группой.

При патологоанатомическом вскрытии тушек убойного молодняка соболей контрольной и опытных групп не было установлено заметных изменений во внутренних органах исследуемых животных.

Применение препаратов Фоспренил и Гамавит на отсаженном молодняке способствовало:

- снижению заболеваемости и увеличению сохранности отсаженного молодняка до 99 – 100 %;

- улучшению показателей физиологического состояния (повышению содержания общего белка в сыворотке крови на 8 – 9 %, повышению уровень гемоглобина на 10 – 11 %, снижению активности трансаминаз АсАТ в 1,3 раза, АлАТ в 1,3 - 1,6 раза);

- улучшению иммунологических показателей (процент фагоцитоза выше в 2,4 - 2,6 раза);

- увеличению прироста живой массы тела по самка на 7 – 9 %, по самцам на 6 – 8 %;

- улучшению показателей продуктивности (зачт по качеству шкурок выше на 5,5 – 6 %).

3.2.3 Экономический эффект и экономическая эффективность при выращивании молодняка соболей с использованием разных доз препаратов Фоспренил и Гамавит Расчет экономического эффекта от применения препаратов Фоспренил и Гамавит (сочетано) при выращивании молодняка соболей с разной дозировкой препаратов.

Расчеты проводились по ценам 2012 г. На 50 головах молодняка соболей (самцы).

Экономический эффект рассчитывали по формуле: Э = Дс - Зв Э – экономический эффект;

Дс – дополнительная стоимость, полученная за счет увеличения количества производимой продукции;

Зв – Затраты на ветеринарные мероприятия.

Сначала рассчитывали экономический эффект для первой опытной группы (доза Фоспренила 0,05 мл/кг, Гамавита 0,1 мл/кг).

В контрольной группе убито на шкурки 30 голов, взято на племя 20 самцов.

Из первой опытной группы убито на шкурки 27 голов, взято на племя 23 самца.

Определяли дополнительную стоимость:

Дс = До1 – Дк До1 = стоимость от продажи шкурок + стоимость от продажи племенного молодняка в первой опытной группе.

В первой опытной группе находили прибыль от продажи шкурок. Зачет по качеству в первой опытной группе составил 68,8 %, т.е. если условно перевести 27 шкурок (они разного качества, а значит и цены) в эталонную шкурку (100 % зачет по качеству) с помощью коэффициентов перевода, то 27 шкурок х 68,8 : 100 = 18,5 эталонным шкуркам. В контрольной группе соболей зачет по качеству составил 63,3 т.е. 30 шкурок = 19 шкуркам эталона (головка высокая нормальная). Цена такой эталонной шкурки в 2012 году в хозяйстве составила 10623 рубля. Прибыль от продажи шкурок в контрольной группе составила (10623х19 = 201837 рублей). Прибыль от продажи шкурок в первой опытной группе составила 196525 (1062318,5).

Далее рассчитывали прибыль от продажи племенного молодняка. В 2012 году цена молодняка соболя самца составила 12000 рублей. В контрольной группе на племя было продано 20 самцов, в первой опытной группе – 23 самца. Рассчитывали стоимость от продаж племенного молодняка в контрольной группе 20 голов х 12000 рублей = 240000 руб. В первой опытной группе 23 головы х 12000 рублей = 276000 рублей. Далее находили стоимость от продажи шкурок и племенного молодняка в первой опытной и контрольной группах.

До1 = 196525 руб. + 276000 = 472525 руб.

Дк = 201837 руб. +240000 = 441837 руб.

Дополнительная стоимость Дс составляет Дс = До1 – Дк;

472525 руб. – 441837 руб. = 30688 руб.

Рассчитывали Зв (затраты на ветеринарные мероприятия (это стоимость израсходованных препаратов). На одну голову соболя было израсходовано за весь период в первой опытной группе Фоспренила 1,0 мл., Гамавита 2,0 мл.

На 50 голов 50 мл. Фоспренила и 100 мл. Гамавита. На одну голову в деньгах 9,6 руб. + 7,2 руб. = 16,8 руб., т.к. 1 мл. Фоспренила стоит 9,6 руб., 1 мл.

Гамавита 3,6 руб.

Т.е. затраты составили 9,6 руб. 50 мл. = 480 руб. Фоспренил.

3,6 руб. 100 мл. = 360 руб. Гамавит.

Итого затраты на ветеринарные мероприятия в первой опытной группе составили 480 + 360 руб. = 840 руб. затраты или 16,8 руб./гол 50 голов = 840 руб. Рассчитывали экономический эффект в первой опытной группе.

Э1 = Дс – Зв Э1 = 30688 руб. – 840 руб. = 29848 руб.

Экономическая эффективность ветеринарных мероприятий на 1 руб.

затрат – это отношение экономического эффекта к затратам на ветеринарные мероприятия. Экономическую эффективность на 1 руб. затрат рассчитывали по формуле:

Ээ =. = 34,3 руб. =

Ээ – экономическая эффективность;

Э – экономический эффект;

Зв – затраты на ветеринарные мероприятия.

Аналогично рассчитывали экономический эффект и экономическую эффективность для второй опытной группы (доза Фоспренила 0,1 мл/кг, Гамавита 0,2 мл/кг).

Дополнительная стоимость во втором опыте Дс= До – Дк В опыте 50 самцов (29 голов – убиты на шкурки, 21 голова продана на племя). 29 шкурок в пересчете на эталон составили 20,1 шкурок (зачет по качеству 69,3 %). Стоимость проданных шкурок = 20,1 х 10623 руб. = 213522 руб.

Стоимость от продажи племенного молодняка во второй опытной группе составила 252000 рублей (21 гол. х12000). Итого 213522+252000 = 465522 руб. Прибыль от продаж шкурок и племенного молодняка в контроле составила, Дк= 441837 рублей (см. расчет для первой опытной группы).

Расчет дополнительной стоимости во второй опытной группе.

Дс = До – Дк; Дс = 465522 руб. – 441837 руб. = 23685 руб.

Рассчитывали затраты на ветеринарные мероприятия (это стоимость препаратов). Во второй опытной группе на 1 голову молодняка соболя израсходовано за весь период опыта Фоспренила – 2 мл., Гамавита – 4 мл.

2 мл. х 9,6 руб. = 19,2 руб.

4 мл. х 3,6 руб. = 14,4 руб.

Итого 33,6 руб. на 1 голову. 33,6 руб.50 голов = 1680 руб. = Зв Находили экономический эффект от ветеринарных мероприятий во втором опыте.

Э = Дс – Зв Э = 23685 руб. – 1680 руб. = 22005 руб.

Экономическая эффективность на 1 рубль затрат:

–  –  –

Т.е. экономическая эффективность на 1 рубль затрат в первой опытной группе составила – 34,3 рубля, а во второй опытной группе (удвоены дозы препаратов) только 13,1 рубля на 1 рубль затрат.

Увеличение дозы препаратов в два раза не выявило значительного повышения показателей физиологического состояния, иммунного статуса и продуктивности соболей. Экономическая эффективность при применении препаратов с удвоенной дозой ниже в 2,7 раза по сравнению с дозами Фоспренила 0,05 мл/кг и Гамавита 0,1 мл/кг живой массы, которые были использованы в дальнейшем при апробации в производственных условиях.

3.3 Апробация схемы сочетанного применения препаратов Фоспренил и Гамавит в производственных условиях В апробации на производстве были задействованы: в опытном отделении самки основного стада - 278 голов, самцы основного стада - 75 голов, самки и самцы однолетки 100 голов, молодняк – 784 головы и контрольное отделение самки основного стада - 278 голов, самцы основного стада – 77 голов, самки и самцы однолетки – 108 голов, молодняк – 622 голов.

Опытные звери получали Фоспренил и Гамавит в дозах 0,05 мл/кг живой массы и 0,1 мл/кг живой массы 1 раз в неделю с кормом на фоне общехозяйственного рациона.

3.3.1 Влияние препаратов Фоспренил и Гамавит на продуктивность самок при апробации на производстве Применение Фоспренила и Гамавита самкам способствовало увеличению показателей воспроизводства, данные представлены в таблице 20.

Представленные в таблице 20 данные подтверждают результаты предыдущего научно-хозяйственного эксперимента о положительном влиянии препаратов Фоспренил и Гамавит на показатели воспроизводства соболей: снижение количества пропустовавших самок на 12,9 %, увеличение плодовитости на 0,2 щенка, увеличение выхода щенков на основную самку на день регистрации на 0,61 щенка по сравнению с контролем (2,75±0,23 против 2,14±0,20 (Р0,95).

Таблица 20. Результаты сочетанного применения Фоспренила и Гамавита на показатели воспроизводства самок

–  –  –

Применение препаратов способствовало увеличению сохранности подсосных щенков на 1,0 %. Увеличение выхода и сохранности щенков, позволило получить от самок опытного отделения на 169 щенков больше, чем от самок контрольного отделения.

–  –  –

3 3,4 3,2 2,75 2,14

–  –  –

Рисунок 20. Сравнение плодовитости и выхода молодняка соболей на основную самку опытной и контрольной группы 3.3.2. Влияние препаратов Фоспренил и Гамавит на половую активность и продуктивность самцов На этом этапе работы были проведен анализ данных по влиянию препаратов Фоспренил и Гамавит на показатели половой активности самцов в период гона (2012 г.) и их продуктивности по результатам щенения самок (2013 г).

Тридцать самцов в возрасте 3-х - 5-и лет получали препараты в тех же дозах, что и самки опытной группы Фоспренил – 0,05 мл/кг, Гамавит – 0,1 мл/кг живой массы тела один раз в неделю с кормом в период подготовки к гону и в гон (июнь, июль). Во время гона было отмечено, что самцы опытной группы более активны и менее агрессивны, по сравнению с самцами контрольной группы.

Результаты оценки производительности самцов приведены в таблице 21.

Таблица 21. Влияние сочетанного применения Фоспренила и Гамавита на половую активность и продуктивность самцов соболей

–  –  –

3.3.3. Апробация схемы сочетанного применения препаратов Фоспренил и Гамавит на отсаженном молодняке соболей Для определения влияния Фоспренила и Гамавита на заболеваемость актуальными болезнями соболей и отход молодняка от регистрации до убоя был произведен анализ данных первичной ветеринарной документации.

Результата анализа данных представлены в таблице 22.

–  –  –

По данным представленным в таблице 21 применение препаратов Фоспренил и Гамавит сочетано молодняку соболей в период выращивания способствовало снижению заболеваемости гастроэнтеритом в 1,6 раза, опрелостью в 1,5 раза, гипотрофией в 1,4 раза и уменьшению отхода после регистрации на 0,5 % по сравнению с контрольным отделением. Снижение заболеваемость опрелостью имеет большое значение для соболеводства, т.к.

последствия этого заболевания снижают качество и цену полученных шкурок (рис. 21 и 22).

Рисунок 21. Заболевание щенков соболей опрелостью Рисунок 22. Последствия «опрелости» на шкурках Для оценки влияния препаратов Фоспренил и Гамавит (сочетано) на иммунную реактивность организма соболей определяли уровень поствакцинальных антител против чумы плотоядных в РН (Вакцина Бионор D).

Результаты серологических исследований приведены в таблице 23 и рисунке 23.

Таблица 23. Титры антител в сыворотке крови привитых соболей

–  –  –

Рисунок 23. Соотношение антител в сыворотке крови опытной и контрольной группы соболей Применение Фоспренила и Гамавита перед вакцинацией способствовало сохранению более высоких титров антител через четыре месяца после вакцинации. В опытной группе титры антител к вирусу чумы плотоядных были выше на 2,5 log2. (P 0,95). Таким образом, Фоспренил и Гамавит положительно повлияли на выработку специфических поствакцинальных антител.

Для оценки влияния препаратов Фоспренил и Гамавит на физиологическое состояние желудочно-кишечного тракта провели анализ кала.

Таблица 24. Результаты клинического анализа кала

–  –  –

Не переваренные есть нет мышечные волокна *** - Р0,999 Результаты клинического анализа кала приведенные в таблице 24 отличаются значительно по показателям содержания белка - в контрольной группе его больше в 5 раз (Р0,999) и по содержанию непереваренных мышечных волокон их нет в опытной группе. Это указывает на улучшение переваримости корма соболями опытной группы при использовании Фоспренила и Гамавита.

Для изучения влияния препаратов Фоспренил и Гамавит на рост щенков проводили измерение живой массы тела соболей перед убоем на шкурку.

Таблица 25. Результаты влияния Фоспренила и Гамавита на живую массу соболей (М±m)

–  –  –

**- Р0,99 В конце опыта живая масса по самкам в опытной группе была достоверно выше на 83,5 г. (Р0,99) и составила 1112,5±18,2 г. против 1029,8±9,9 г. контрольной группы, т.е. выше на 8%. В опытной группе по самцам живая масса также была достоверно выше на 68,0 г. (Р0,99) и составила 1419,0±13,8 г. против 1351,5±13,1 г., т.е. выше на 5 % по сравнению с контрольной группой. Это кореллирует с размером полученных шкурок.

Для изучения влияния препаратов Фоспренил и Гамавит на показатели продуктивности молодняка соболей изучали размер и качество шкурок убойного молодняка. Результаты представлены в таблице 26.

Таблица 26. Размер и качество шкурок убойного молодняка соболей

–  –  –

Цвет 2 46,6 53,3 3 26,7 16,7 4 6,7 Размер

–  –  –

3% 10% 27% 60% Рисунок 24. Процентное соотношение размеров шкурок в контрольной группе

–  –  –

13% 20% 67% Рисунок 25. Процентное соотношение размеров шкурок в опытной группы Как видно из таблице 26 и на рисунках 24 и 25 доля крупных и особо крупных шкурок в опытной группе составила 80 %, а в контрольной 70 %, т.е. больше на 10 %, мелкие шкурки в опытной группе отсутствуют, а в контрольной группе составили - 3,3 %.

–  –  –

Рисунок 27. Процентное соотношение шкурок по группам пороков Анализ данных по качеству шкурок показал, что шкурок без пороков в опытной группе больше, чем в контроле на 3,4 % (56,7 % против 53,3 %), шкурки второй и третьей группы пороков и в опытной и в контрольной группе составили 43 %, шкурок четвертой группы пороков в опытной группе не было, а в контроле она составила - 3,3 %. Это способствовало увеличению процента зачета по качеству на 7,3 % (P 0,99). Таким образом, применение Фоспренила и Гамавита способствовало увеличению размера и улучшению качества шкурок.

–  –  –

Рисунок 28. Процентное соотношение зачета по качеству 3.3.4 Экономическая эффективность от применения препаратов Фоспренил и Гамавит при апробации в производственных условиях Экономический эффект от применения препаратов Фоспренил и Гамавит рассчитывали по формуле Э = Пу+ Дс - Зв Э – экономический эффект;

Пу– предупрежденный ущерб;

Дс–дополнительная стоимость, полученная за счет увеличения количества производимой продукции;

Зв–Затраты на препараты.

–  –  –

Предупрежденный ущерб равняется разнице в деньгах между ущербами от падежа в опытной и контрольной группах животных. Т.к. в опытной группе после регистрации щенков пало на 2 головы меньше чем в контрольной, то Пу= 2 головы 6650 рублей = 13300 рублей.

6650 – себестоимость 1 головы молодняка.

Дополнительную стоимость от шкурковой продукции рассчитывали по разнице прибыли полученной от реализации шкурок опытной и контрольной групп. От опытной группы соболей получено 648 шкурок с зачетом по качеству 83,4 т.е. в пересчете на эталонную шкурку – (головка высокая нормальная – 100 % зачета по качеству) это будет 540 шкурок (64883,4/100%). В контрольной группе получено 529 шкурок с зачетом по качеству 76,1 % т.е. 403 шкурки (52976,1/100 %). Реализационная цена одной эталонной шкурки составила 9650 рублей (по цене 2013 года).

Дс2= (5409650) – (403 9650) = 1322050 рублей.

Рассчитывали стоимость израсходованных препаратов – Зв. На одну самку основного стада израсходовано в период беременности и лактации Фоспренила – 1 мл 8 руб.; Гамавита – 2 мл 5,3 руб. итого 18,6 рублей.

На 278 самок израсходовано 18,6 278 = 5171 рублей,

На молодняк в период выращивания на 1 голову израсходовано:

Фоспренила – 1 мл, Гамавита – 2 мл., т.е. тоже 18,6 рублей на 1 голову.

18,6784 голов = 14582 рубля.

Вз = 5171+14582=19753 рублей.

Экономический эффект:

Э = Пу + Дс–Вз Э = 13300 + 1322050- 19753 = 1315597руб.

Экономическая эффективность ветеринарных мероприятий на 1 руб.

затрат – это отношение экономического эффекта к затратам на ветеринарные мероприятия. Экономическую эффективность на 1 руб. затрат рассчитываем по формуле:

–  –  –

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

Успешное разведение соболей в условиях крупномасштабного производства, которое сопровождается риском технологических стрессов и алиментарных иммунодефицитов, возможно только при применении препаратов повышающих физиологическую адаптацию и иммунный статус организма соболей. До проведения наших исследований по изучению влияния препаратов Фоспренил и Гамавит на физиологическое состояние, иммунный статус и продуктивность соболей, эти препараты уже успешно использовались в других отраслях животноводства: свиноводство, птицеводство, кролиководство, норководство, коневодство (Деева А.В., Белоусова Р.В., Данилов П.Л. и др., 2004; Грачева Н.С., Зайцева М.Л., Деева А.В., 2005; Ростроса П.А., Зайцева М.Л., Деева А.В., 2006; Жуков С.П., 2005;

Слободяник В.И., 2013; Деева А.В., Зайцева М.Л., Стикина Е.О., 2007).

Важной биологической особенностью соболей является продолжительный срок развития эмбрионов (273-275 дней) и наличие латентной стадии беременности (6-7 месяцев), это увеличивает риск гибели эмбрионов. Наибольшее число пренатальных потерь приходится на предплантационный и плантационный периоды развития. Нарушения в сложном иммунозависимом механизме взаимоотношений «мать-зародыш»

также приводит к гибели эмбрионов. Гибель эмбрионов в этот период развития во многом зависит от состояния здоровья беременных самок.

Частичная и полная гибель эмбрионов относительно выше у более плодовитых самок соболей (Беляев Д.К., Уткин А.Г., 1960). Еще в 70х годах Фокин В.Б. и Вачугов В.И. (1972) применяли эмбриоплацентолизат и плацентолизат с кормом на норках в период беременности (до и после имплантации), что повышало плодовитость на 25 %. По мнению авторов лизаты плаценты способствовали сохранению эмбрионов, что и вызывало повышение плодовитости. В наших экспериментах применение Гамавита, содержащего плаценту денатурированную эмульгированную, соболям в период латентной стадии беременности и истинной беременности (т.е. до и после имплантации), также способствовало увеличению плодовитости на 11% (0,2 щенка). Т.е. можно предположить, что Гамавит обеспечивает имплантацию большего числа эмбрионов и их нормальное развитие и как следствие повышает плодовитость и выход щенков. Влияние Фоспренила и Гамавита на воспроизводительные способности (увеличение оплодотворяемости, плодовитости), снижение эмбриональной смертности и сохранности в первые дни жизни также подтверждаются рядом авторов при применении на других видах животных (Деева А.В., Белоусова Р.В., Данилов П.Л. и др., 2004; Грачева Н.С., Зайцева М.Л., Деева А.В., 2005; Ростроса П.А., Зайцева М.Л., Деева А.В., 2006; Жуков С.П., 2005; Слободяник В.И., 2013;

Санин А.В, Деева А.В., Виденина А.А., 2013).

Сохранность эмбрионов зависит от многих факторов в том числе и от стрессов возникающих в период беременности. По данным Владимирова А.В. (2002) у самок в результате стресс-факторов могут быть не благополучные роды, рождение недоношенных или мертвых щенков. Т.к.

соболя из-за чрезвычайно возбудимой нервной системы более, подвержены стрессам и хуже других зверей адаптируются к резко изменяющимся факторам окружающей обстановки, то применение адаптогенов может благотворно повлиять на смягчение негативных воздействий стресс-факторов на организм. Гамавит относится к группе адаптогенов, т.е. к препаратом способным повышать сопротивляемость организма к широкому спектру вредных воздействий (алиментарный, температурный и технологический стрессы). Этим можно объяснить лучшие результаты щенения у самок получавших Гамавит и Фоспренил. Исследования на цыплятах при выпаивании им Фоспренила и Гамавита показало, что они увеличивают защиту от стресс-факторов (Санин А.А., Деева А.В., Виденина А.А., 2013).

Применение препаратов Фоспренил и Гамавит увеличило выход щенков на самку в опытных группах на 0,4 - 0,6 щенка по сравнению с контролем. Применение Фоспренила и Гамавита в период подготовки к гону стимулирует овогенез у самок и сперматогенез у самцов. Стимуляцию овогенеза и сперматогенеза можно объяснить содержанием в Гамавите плаценты денатурированной эмульгированной, т.к. плацента концентрирует в себе большое количество биологически активных веществ, белков, липидов, ферментов, гормонов; в ней выявлены пептиды гомологичные гонадотропинам. Применение биостимулятора – ПАН (плацента активное начало) благоприятно повлияло на воспроизводительную функцию у коров и прирост массы тела у телят (Беляев В.И. с соавт., 2002; Лободин К.А., 2006).

При анализе работы самцов получавших Фоспренил и Гамавит возросла полигамия с 1:3,8 до 1:4,4 и выход щенков на 1 самца на 3,1 щенка, количество пустых самок в опытной группе самцов меньше на 7,2 %. На хряках доказано, что Фоспренил и Гамавит существенно улучшает качество спермы хряков (время выживаемости сперматозоидов увеличивается на 20 часов, подвижность в 1,43 раза, концентрация в 2,5 3 раза, оплодотворяемость на 11 %) (Санин А.В., 2012). Снижение количества пропустовавших самок на 5 - 12,9 % можно объяснить влиянием адаптогена Гамавита, который снижает воздействие стресс-факторов, препятствующих овуляции у самок во время гона. Аналогичные результаты получены на свиньях. Применение препаратов Фоспренил и Гамавит в свиноводстве повышает оплодотворяемость свиноматок, снижает прохолост, увеличивает выход поросят на 1 свиноматку на 0,1 - 0,6 головы (Деева А.В., Пронин А.В., Соколов В.Д. и др., 2006; Деева А.В., М.Л. Зайцева, Г.Г. Мехдиханов и др., 2006). Как известно макро- и микро- элементы и витамины влияют на интенсивность обмена веществ в организме (Никонова Э.Б., 2007; Тютюнник Н.Н., 2002). Можно предположить, что Гамавит содержащий макро- и микроэлементы, витамины и плаценту в которой выявлены пептиды гомологичные лактогену (Лободин К.А., 2006) способствовал увеличению молочности самок и повышению энергии роста подсосных щенков, т.к. абсолютный прирост живой массы у щенков в первые 20 дней жизни в опытной группе выше на 6,4 %. После перехода молодняка на самостоятельное питание, молодняк опытных групп соболей лучше прибавлял в весе на протяжении всего периода выращивания, достигнув к убою различия в живой массе на 6 – 9 % в пользу опытных животных, что кореллирует с увеличением размера шкурок. Аналогичные результаты получены на кроликах. У молодняка, которому Фоспренил применяли двукратно на 45 и 80 день масса тела повышалась на 6 %, а площадь шкурки на 8,8 % (Жуков С.П., 2005;

Слободяник В.И., 2013).

По данным Тютюнника Н.Н. (2002), Никоновой Э.Б. (2007), Минина М.В. (2013) недостаточность микроэлементов отражается на физиологическом статусе зверей и ведет к ухудшению качества пушнины.

Присутствием микроэлементов и витаминов в составе Гамавита можно объяснить улучшение качества шкурок. Зачет по качеству шкурок, полученных от опытных соболей выше на 5,5 - 7,3 %. Полученные нами данные по увеличению живой массы, размеру и улучшению качества шкурок согласуется с результатами, полученными от применения Фоспренила и Гамавита на норках (Грачева Н.С., Деева А.В., 2005; Ростроса П.А., 2008).

Ростостимулирующий эффект от применения Фоспренила и Гамавита был получен при выращивании бройлеров, телят, кроликов, норок (Санин А.В., Деева А.В., Виденина А.А. и др., 2013; Жуков С.П., 2005; Ростроса П.А., 2008). На телятах и ягнятах было доказано, что Гамавит индуцирует 2-х кратное увеличение соматотропного гормона (СТГ), что и способствует ростостимулирующему эффекту (Лиханов П.С., 2007; Санин А.В., Деева А.В., Наровлянский А.Н., 2013). Скорость роста вероятно очень важна в соболеводстве, это надо учитывать при выборе молодняка на племя. Самки проявляющие признаки половой охоты в возрасте 15 месяцев (скороспелые) имели наибольшие показатели скорости роста (Маматкина Э.Г., 1968).

Известно, что СТГ увеличивает массу вилочковой железы, стимулирует пролиферацию и дифференцировку тимоцитов (Pierpaoli W., Sorkin E., 1969;

Arrenbrecht S., Sorkin E., 1973), т.е. стимулирует клеточный иммунитет.



Pages:   || 2 |

Похожие работы:

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФГБОУ ВПО "УРАЛЬСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ ЛЕСОТЕХНИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ" Уральское отделение секции наук о лесе РАЕН ФГБУ науки "Ботаническ...»

«ООО "ЕВРОТЕРМИНАЛ"ПЛАН ДЕЙСТВИЙ В ЭКОЛОГИЧЕСКОЙ И СОЦИАЛЬНОЙ СФЕРЕ (ESAP) Проект создания морского терминала, удалнного от моря Подготовил: Михаил Ваненков 9/21/2009 ПЛАН ДЕЙСТВИЙ В ЭКОЛОГИЧЕСКОЙ И СОЦИАЛЬНОЙ СФЕРЕ (ESAP), 2009 Требования "ЕВРОТЕРОтветственПлан зако...»

«Проект ЭКОЛОГИЧЕСКИЙ КОДЕКС КЫРГЫЗСКОЙ РЕСПУБЛИКИ СОДЕРЖАНИЕ: ОБЩАЯ ЧАСТЬ Глава 1. Общие положения Глава 2. Компетенция государственных органов и органов местного самоуправления Кыргызской Р...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФГБОУ ВПО "ТУВИНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ" КЫЗЫЛСКИЙ ПЕДАГОГИЧЕСКИЙ ИНСТИТУТ Кафедра педагогики и методики дошкольного и начального образования Роль театрал100€анных игр в экологи...»

«Разведение редких видов: джейрана, кулана, лошади Пржевальского в Экоцентре Джейран“ и развитие экологического туризма Солдатова Н.В. Зам. дир. по НИР Экоцентр "Джейран", Узбекистан В Экоцентре Джейран, не только удалось добиться разведения редк...»

«УДК 636.2: 637.112 СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ ТЕХНОЛОГИЧЕСКИХ ПАРАМЕТРОВ ПРИ ОРГАНИЗАЦИИ РАЗДОЯ КОРОВ НА СОВРЕМЕННЫХ ВЫСОКОИНТЕНСИВНЫХ ФЕРМАХ В.П. СЛАВОВ НААНУ Житомирский национальный агроэкологический университет А.П. СЛАВОВ, Н.В. РЫБИЙ Институт животноводства НААН Украины Постановка проблемы. Получение высокого надоя кор...»

«Министерство образования и науки Российской Федерации Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Уральский государственный педагогический университет" Институт педагогики и психологии детства Факультет педагогики и методики начального образования Кафедра естест...»

«ЗАКОН РЕСПУБЛИКИ ТАДЖИКИСТАН О ГЕОГРАФИЧЕСКИХ УКАЗАНИЯХ (в редакции Закона РТ от 03.07.2012г.№855) Настоящим Законом регулируются отношения, возникающие в связи с правовой охраной и использованием географических указаний происхождения тов...»

«МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ по сопоставлению данных разведки и разработки месторождений твердых полезных ископаемых Москва, 2007 Разработаны Федеральным государственным учреждением "Государственной комиссией по...»

«СОГЛАШЕНИЕ МЭРОВ ПО КЛИМАТУ И ЭНЕРГИИ Мы, Мэры, подписывающие это Соглашение, разделяем видение устойчивого будущего – независимо от размеров нашего муниципалитета и его расположения на карте мира. Это общее видение стимулирует наши действия по решению взаимосвязанных проблем: смягчения последствий изменения климата...»

«Министерство образования и науки Республики Казахстан Костанайский государственный университет имени А. Байтурсынова Кафедра биологии и химии Л.А.Брагинец Дендрология Учебно-методическое пособие Костанай, 2015 УДК 630(...»

«ВЕСЦІ НАЦЫЯНАЛЬНАЙ АКАДЭМІІ НАВУК БЕЛАРУСІ № 3 2012 СЕРЫЯ БІЯЛАГІЧНЫХ НАВУК УДК 579.22:582.28:66.081 В. В. ЩЕРБА, Т. А. ПУЧКОВА, Л. Т. МИШИН ОБРАЗОВАНИЕ СОЕДИНЕНИЙ ИНДОЛЬНОЙ ПРИРОДЫ СЪЕДОБНЫМИ И ЛЕКАРСТВЕННЫМИ ГРИБАМИ Институт микробиологии НАН Беларуси, e-mail: micompa@mbio.bas-net.by (...»

«ФЩА TOCChn Администрация Новоуральского городского М е ж р е г и о н а л ь н о е у п р а в л е н и е № 31 округа Ф е д е р а л ь н о г о медико-биологического Главе администрации НГО А.Б. Баранову агентства (МЕЖРЕГИОНАЛЬНОЕ УПРАВЛЕНИЕ № 31 ул. Ми...»

«Белорусский национальный технический университет Тульский государственный университет Донецкий национальный технический университет 9-я международная конференция по проблемам горной промышленности, строительства и энергетики СОЦИАЛЬНО-ЭКОНОМИЧЕСКИЕ И ЭКОЛОГИЧЕСКИЕ ПРОБЛЕМЫ ГОРНОЙ ПРОМЫШЛЕННОСТИ, СТРОИТЕЛЬСТВА И ЭНЕРГЕТИКИ Информа...»

«Козин Виталий Владиславович РАННИЕ МОЛЕКУЛЯРНЫЕ И КЛЕТОЧНЫЕ СОБЫТИЯ ФОРМИРОВАНИЯ МЕЗОДЕРМЫ У НЕРЕИДНЫХ ПОЛИХЕТ 03.03.05 – Биология развития, эмбриология Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук Научный руководитель к.б.н., доцент Костюченко Роман Петрович Санкт-Петербург – 2017 ОГЛАВЛЕНИЕ Введени...»

«Российская академия Наук уРальское отделеНие иНститут экологии РастеНий и животНых СОВЕТЫ МОЛОДОМУ УЧЕНОМУ методическое пособие для студентов, аспирантов, младших научных сотрудников и, может быть, не только для них Подготовлено к Всероссийской конференции молодых ученых, посвященной 50-летию первой молодежной конференции в И...»

«Экз. № _ Утвержден: Приказом Министерства Природных ресурсов и экологии Саратовской области от 03.11.2011 г. № 521 ЛЕСОХОЗЯЙСТВЕННЫЙ РЕГЛАМЕНТ ГКУ СО "Северо-Восточные лесничества" НОВОБУРАССКОГО ЛЕСНИЧЕСТВА САРАТОВСКОЙ ОБЛАСТИ Саратов 2015 СОДЕРЖАНИЕ ВВЕДЕНИЕ ГЛАВА 1 1.1. КРАТКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ЛЕСНИЧЕСТВА 1.1.1. Н...»

«ПОЛОЖЕНИЕ О ПРИМЕНЕНИИ МЕТОДОВ МАТЕМАТИЧЕСКОЙ СТАТИСТИКИ ДЛЯ УЧЕТА И КОНТРОЛЯ ЯДЕРНЫХ МАТЕРИАЛОВ РБ 066 11 проведение сертификации ФЕДЕРАЛЬНАЯ СЛУЖБА ПО ЭКОЛОГИЧЕСКОМУ, ТЕХНОЛОГИЧЕСКОМУ И АТОМНОМУ НАДЗОРУ У...»

«УДК 504.73(574.53) ЭКОЛОГИЯ ЖАМБЫЛСКОЙ ОБЛАСТИ Самеков Бактияр Нржанлы Студент Евразийского Национального Университета, Астана Научный руководитель – д.г.н., профессор Мусабаева М. Н. Жамбылская область расположена на юге республики,образована в 1939 году....»

«RU 2 409 771 C2 (19) (11) (13) РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ (51) МПК F16B 19/08 (2006.01) F16B 5/04 (2006.01) B21J 15/00 (2006.01) ФЕДЕРАЛЬНАЯ СЛУЖБА ПО ИНТЕЛЛЕКТУАЛЬНОЙ СОБСТВЕННОСТИ, ПАТЕНТАМ И ТОВАРНЫМ ЗНАКАМ (12) ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ К ПАТЕНТУ...»

«Российская Федерация Управление образования Администрации Дмитровского муниципального района Московской области Муниципальное общеобразовательное учреждение РЫБНЕНСКАЯ СРЕДНЯЯ ОБЩЕОБРАЗОВАТЕЛЬНАЯ ШКОЛА 141821, п/о Рыбное, д.26 т/ф 8(496) -2262-366 Дмитровский р-он 8(496) -2262-388 Москов...»

«ПРОДУКТЫ ФУНКЦИОНАЛЬНОГО НАЗНАЧЕНИЯ Дробот В.И., д.т.н., профессор; Михоник Л.А., к.т.н., Грищенко А., аспирант Национальный университет пищевых технологий, г. Киев Углубление знаний человечества о роли продуктов питания в состоянии здоровья в условиях экологического неблагополучия привело к...»

«УДК 504 Т. А.Мелешко, В.В.Толмачева, г. Шадринск Социально-экологические проблемы взаимодействия человека и природы В данной статье представлен историко-логический анализ проблемы взаимоотношения человека и природы, выделены основные...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ УКРАИНЫ ОДЕССКИЙ НАЦИОНАЛЬНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ И. И. МЕЧНИКОВА БИОЛОГИЧЕСКИЙ ФАКУЛЬТЕТ МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ДЛЯ ПРОВЕДЕНИЯ ПРАКТИЧЕСКИХ ЗАНЯТИЙ ПО КУРСУ "ПОПУЛЯЦИОННАЯ МОРФОЛОГИЯ" (для студентов 3-го курса...»










 
2017 www.book.lib-i.ru - «Бесплатная электронная библиотека - электронные ресурсы»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.