WWW.BOOK.LIB-I.RU
БЕСПЛАТНАЯ  ИНТЕРНЕТ  БИБЛИОТЕКА - Электронные ресурсы
 
s

«ОБЩАЯ ФАРМАКОПЕЙНАЯ СТАТЬЯ «2.6.13. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ИСПЫТАНИЯ НЕСТЕРИЛЬНОЙ ПРОДУКЦИИ: ИСПЫТАНИЯ НА НАЛИЧИЕ СПЕЦИФИЧЕСКИХ МИКРООРГАНИЗМОВ» Разработана на ...»

МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ

ПРОЕКТ

ОБЩАЯ ФАРМАКОПЕЙНАЯ СТАТЬЯ

«2.6.13. МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ИСПЫТАНИЯ

НЕСТЕРИЛЬНОЙ ПРОДУКЦИИ:

ИСПЫТАНИЯ НА НАЛИЧИЕ СПЕЦИФИЧЕСКИХ

МИКРООРГАНИЗМОВ»

Разработана на основе Европейской Фармакопеи 2011 года Введена в действие с приказом Министерства здравоохранения Республики Беларусь 2010 года № от взамен статьи ГФ РБ, том 1, стр. 166 «2.6.13. Микробиологические испытания нестерильной продукции (испытания на наличие специфических микроорганизмов)»

от 01.01.2007 г.

1. ВВЕДЕНИЕ Испытания, описанные далее в статье, позволяют определять отсутствие или предельное содержание специфических микроорганизмов, которые могут быть обнаружены в приведенных условиях.

Испытания предназначены в первую очередь для определения соответствия требованиям спецификации по микробиологической чистоте, как субстанций, так и лекарственных средств. В случае использования методик для таких целей следуют инструкциям, приведенным ниже, включая количество образцов, которое следует взять, и интерпретацию результатов, в соответствии с тем, как изложено далее.

Альтернативные микробиологические методики, включая автоматические методы, могут использоваться в том случае, если доказана их эквивалентность фармакопейным методикам.

2. ОСНОВНЫЕ ОПЕРАЦИИ

Подготовка образцов проводится так, как описано в общей статье 2.6.12.

В случае если продукт обладает антимикробным действием, то его подавляют до такой степени, на сколько это возможно, или нейтрализуют как описано в общей статье 2.6.12.

Общая фармакопейная статья 2.6.13. Микробиологические испытания нестерильной продукции: испытания на наличие специфических микроорганизмов В случае если поверхностно-активные вещества используются при подготовке образцов должно быть продемонстрировано, как это указано в общей статье 2.6.12, отсутствие их токсичности для микроорганизмов и их совместимость с используемыми инактиваторами.

3. РОСТОВЫЕ И ИНГИБИРУЮЩИЕ РОСТ СВОЙСТВА СРЕД, ПРИГОДНЫХ ДЛЯ

ПРОВЕДЕНИЯ ИСПЫТАНИЙ И ОТРИЦАТЕЛЬНОГО КОНТРОЛЯ

Способность методики определять микроорганизмы в присутствии испытуемого образца должна быть установлена предварительно. Пригодность методики должна быть подтверждена, в случае, если в выполнение испытаний или в образец вводятся изменения, которые могут повлиять на результат испытаний.

3-1. ПОЛУЧЕНИЕ ТЕСТ-ШТАММОВ Используют стабильные стандартизованные суспензии тест-штаммов или готовят их как указано ниже. Используется техника сохранения эталонного банка культур микроорганизмов таким образом, чтобы живые микроорганизмы, использованные для инокуляции, были удалены не более чем на 5 пересевов от оригинального контрольного банка культур микроорганизмов.

3-1-1. Аэробные микроорганизмы. Бактериальные тест-штаммы выращивают отдельно на бульоне или агаре на основе гидролизата казеина и соевых бобов при температуре 30—35° в течение 18—24 ч. Тест-штаммы С Candida albicans выращивают отдельно на декстрозном бульоне Сабуро или декстрозном агаре Сабуро при температуре 20—25° в течение 2—3 дней.





С

– Staphylococcus aureus ATCC 6538, NCIMB 9518, CIP 4.83 или NBRC 13276;

– Pseudomonas aeruginosa ATCC 9027, NCIMB 8626, CIP 82.118 или NBRC 13275;

– Escherichia coli ATCC 8739, NCIMB 8545, CIP 53.126 или NBRC 3972;

– Salmonella enterica подвид enterica serovar Typhimurium ATCC 14028 или, как альтернативный, Salmonella enterica подвид enterica serovar Abony NBRC 100797, NCTC 6017 или CIP 80.39;

– Candida albicans ATCC 10231, NCPF 3179, IP 48.72 или NBRC 1594.

Для приготовления суспензий используют забуференный раствор натрия хлорида и пептона рН 7,0 или фосфатный буферный раствор рН 7,2. Используют суспензию в течение 2—24 ч при хранении при температуре 2—8° С.

3-1-2. Клостридии. Используют штаммы Clostridium sporogenes ATCC 11437 (NBRC 14293, NCIMB 12343, CIP 100651) или ATCC 19404 (NCTC 532 или CIP 79.03) или NBRC 14293. Тест-штаммы клостридий выращивают в анаэробных условиях на обогащенной среде для клостридий при температуре 30—35° в С течение 24—48 ч. В качестве альтернативы приготовлению и последующему разведению свежей суспензии вегетативных клеток Cl. sporogenes, для инокуляции используют стабильную суспензию спор. Стабильная суспензия спор может сохраняться при температуре 2—8° в течение установленного периода.

С 3-2. ОТРИЦАТЕЛЬНЫЙ КОНТРОЛЬ Для проверки условий испытания проводят отрицательный контроль с использованием выбранного разбавителя вместо испытуемого образца. Не должно наблюдаться роста микроорганизмов. Отрицательный контроль проводят Общая фармакопейная статья 2.6.13. Микробиологические испытания нестерильной продукции: испытания на наличие специфических микроорганизмов также при испытании продуктов как указано в разделе 4. Неудавшийся отрицательный контроль требует проведения расследования.

3-3. РОСТОВЫЕ И ИНГИБИРУЮЩИЕ РОСТ СВОЙСТВА СРЕД

Испытания проводят на каждой серии готовой среды и на каждой серии среды, приготовленной из дегидратированной среды или из указанных ингредиентов.

Подтверждают приемлемость свойств подходящих сред как это указано в таблице 2.6.13.-1.

Испытания ростовых свойств жидких сред: инокулируют порцию соответствующей среды небольшим количеством подходящих микроорганизмов (не более 100 КОЕ). Инкубируют при определенной температуре в течение периода времени, не большего, чем самый короткий период, указанный в испытании. Наблюдается отчетливый рост микроорганизмов сравнимый с тем, что наблюдался для ранее протестированной и одобренной серии среды.

Испытания ростовых свойств твердых сред: выполняют методом поверхностного посева, инокулируя каждую чашку небольшим количеством (не более 100 КОЕ) соответствующих микроорганизмов. Инкубируют при определенной температуре в течение периода времени, не большего, чем самый короткий период, указанный в испытании. Наблюдается отчетливый рост микроорганизмов сравнимый с тем, что наблюдался для ранее протестированной и одобренной серии среды.

Испытания на ингибирующие рост свойства жидких и твердых сред:

инокулируют порцию соответствующей среды не менее чем 100 КОЕ подходящих микроорганизмов. Инкубируют при определенной температуре в течение периода времени, не меньшего, чем самый длинный период, указанный в испытании. Не должен наблюдаться рост микроорганизмов.

выполняют методом

Испытания на индикаторные свойства:

поверхностного посева, инокулируя каждую чашку небольшим количеством (не более 100 КОЕ) соответствующих микроорганизмов. Инкубируют при определенной температуре в течение периода времени, находящегося в специфицированных для испытания рамках. Колонии сравнимы по проявлению и индикаторным реакциям с теми, что наблюдались для ранее протестированной и одобренной серии среды.

3-4. ИСПЫТАНИЯ НА ПРИГОДНОСТЬ МЕТОДА

Для каждого испытуемого продукта, выполняют подготовку образцов как описано в соответствующем подразделе раздела 4. Прибавляют тест-штаммы при перемешивании в указанную питательную среду. Инокулируют тест-штаммы по отдельности. Используют количество микроорганизмов не более чем 100 КОЕ при проведении испытания. Выполняют испытание как описано в соответствующем подразделе раздела 4, используя наименьший период времени из предписанных.

Специфицированные микроорганизмы должны быть определены реакциями индикации, как описано в разделе 4.

Проявление любой антимикробной активности продукта неизбежно влечет за собой модификации методики проведения испытаний (см. 4-5-3 в общей статье 2.6.12). В случае если для данного продукта антимикробная активность не может быть нейтрализована без влияния на тестируемые микроорганизмы, то предполагается, что ингибированные микроорганизмы не будут присутствовать в продукте.

4. ИСПЫТАНИЕ ПРОДУКТОВ

Общая фармакопейная статья 2.6.13. Микробиологические испытания нестерильной продукции: испытания на наличие специфических микроорганизмов 10 мл испытуемого образца, подготовленного, как описано в общей статье 2.
6.12, но с использованием среды №11 вместо буферного раствора с натрия хлоридом и пептоном рН 7,0, инкубируют в течение 2—5 ч при температуре 30— 35° вносят в 100 мл питательной среды №3, перемешивают и инкубируют при С, температуре 30—35° в течение 24—48 ч. При наличии роста делают пересев на С среду №4 в чашке Петри. Посевы инкубируют при температуре 30—35° в С течение 24—48 ч. Наличие роста малиновых с металлическим блеском или без него; розовых, бесцветных, блестящих, выпуклых колоний грамотрицательных палочек указывает на возможное загрязнение лекарственного средства бактериями сем. Enterobacteriaceae и некоторыми другими грамотрицательными бактериями. Выросшие колонии пересевают, каждую отдельно, со среды №4 на скошенную в пробирках среду №1 и выращивают при температуре 30—35° С течение 18—20 ч. Из каждой пробирки с чистой культурой делают пересевы на среду №6 (в двух повторностях) и среду №7.

После посева в половину пробирок со средой №6 вносят по 0,5 мл стерильного вазелинового масла. Все посевы инкубируют при температуре 30— 35° в течение 18—20 ч. Ферментацию глюкозы устанавливают по изменению С цвета среды №6 из красного в желтый в пробирках с маслом и без него. О наличии нитритов в среде №7 судят по появлению красного окрашивания при внесении в среду реактива Грисса. Параллельно исследуют чистые культуры на наличие фермента цитохромоксидазы. Если в образце обнаружены грамотрицательные неспорообразующие палочки, которые дают отрицательную оксидазную реакцию, ферментируют глюкозу с образованием кислоты (или кислоты и газа) и восстанавливают нитраты в нитриты, испытуемый продукт контаминирован бактериями семейства Enterobacteriaceae.

Тест на цитохромоксидазу. Полоску фильтровальной бумаги смачивают реактивом и наносят стеклянной палочкой суточную чистую культуру исследуемых бактерий со среды №1. Синее окрашивание, появляющееся через 2—5 мин, свидетельствует о положительной оксидазной реакции.

Количественная оценка. Инокулируют подходящие количества среды №3 гомогенатом и /или его разбавлениями, содержащими, соответственно, 0,1 г, 0,01 г и 0,001 г (или 0,1 мл, 0,01 мл и 0,001 мл) испытуемого продукта. Инкубируют при температуре 30—35° в течение 24—48 ч. При наличии роста делают пересев на С плотную среду №4 (агар Эндо) и инкубируют при той же температуре в течение 18—24 ч. В случае появления характерных для Enterobacteriaceae колоний грамотрицательных палочек определяют количество энтеробактерий в 1 г или в 1 мл образца по таблице 2.6.13.-2.# 4-2. ESCHERICHIA COLI 4-2-1. Приготовление образца и предварительное инкубирование.

Готовят образец разведением 1 к 10 не менее чем из 1 г испытуемого продукта как описано в общей статье 2.6.12 и используют 10 мл или количество, соответствующее 1 г или 1 мл, для инокуляции подходящего количества (определенного как указано в пункте 3-4) бульона на основе гидролизата казеина и соевых бобов, перемешивают и инкубируют при температуре 30—35° в С течение 18—24 ч.

4-2-2. Селекция и пересев. Встряхивают контейнер, переносят 1 мл бульона на основе гидролизата казеина и соевых бобов в 100 мл бульона Макконки и инкубируют при температуре 42—44° в течение 24—48 ч.

С Общая фармакопейная статья 2.6.13. Микробиологические испытания нестерильной продукции: испытания на наличие специфических микроорганизмов Пересевают на чашки с агаром Макконки и инкубируют при температуре 30—35°С в течение 18—72 ч.

4-2-3. Интерпретация результатов. Рост колоний свидетельствует о возможном присутствии E. coli. Результат подтверждается идентификационными испытаниями.

Продукт выдерживает испытание, если подобные колонии не обнаруживаются или испытания идентификации дают отрицательный результат.

# В качестве альтернативного испытания допускается определение Escherichia coli как указано ниже.

10 мл образца в питательной среде №11 или количество, представляющее 1 г или 1 мл продукта, подготовленное и инкубированное как описано для определения бактерий семейства Enterobacteriaceae, помещают в 100 мл питательной среды №3 и инкубируют при температуре 30—35° в течение 18—24 С ч. Пересевают на среду №4 и инкубируют при температуре 30—35° в течение С 18—24 ч. На среде №4 Escherichia coli образуют, как правило, характерные малиновые колонии с металлическим блеском или без него, диаметром 2—4 мм.

Подозрительные на принадлежность к Escherichia coli колонии микроскопируют.

При обнаружении грамотрицательных палочек отсевают на скошенную в пробирках плотную среду №1 и инкубируют при температуре 30—35° в течение С 18—24 ч. Из каждой пробирки с чистой культурой делают пересевы на среды №14 (агар Симмонса) и №15 (бульон Хоттингера), а также используют для теста на цитохромоксидазу. Через 18—24 ч. инкубации при температуре 30—35° С отмечают бактериальный рост или его отсутствие на средах №14 и №15.

Утилизацию цитрата устанавливают по изменению цвета среды № 14 из зеленого в синий. Наличие индола определяют по появлению красного кольца на поверхности среды №15 при добавлении реактива Ковача или Эрлиха.

Если в образце обнаружены грамотрицательные неспорообразующие палочки, не обладающие ферментом цитохромоксидазой, не утилизирующие цитрат натрия и образующие индол, считают, что испытуемый продукт контаминирован Escherichia coli.# 4-3. SALMONELLA 4-3-1. Приготовление образца и предварительное инкубирование.

Готовят образец испытуемого продукта как описано в общей статье 2.6.12 и используют количество, соответствующее не менее 10 г или 10 мл для инокуляции подходящего количества (определенного как указано в пункте 3-4) бульона на основе гидролизата казеина и соевых бобов, перемешивают и инкубируют при температуре 30—35° в течение 18—24 ч.

С 4-3-2. Селекция и пересев. Переносят 0,1 мл бульона на основе гидролизата казеина и соевых бобов в 10 мл обогатительного питательного бульона Раппапорта Вассилиадиса для Salmonella и инкубируют при температуре 30—35° в течение 18—24 ч. Пересевают на чашки с агаром на основе ксилозы, С лизина, дезоксихолата. Инкубируют при температуре 30—35° в течение 18—48 С ч.

4-3-3. Интерпретация результатов. На возможное присутствие Salmonella указывает рост хорошо развитых, красных колоний или красных колоний с черным центром. Присутствие Salmonella подтверждается в идентификационных испытаниях.

Общая фармакопейная статья 2.6.13. Микробиологические испытания нестерильной продукции: испытания на наличие специфических микроорганизмов Продукт выдерживает испытание, если колонии, описанного типа не обнаруживаются или испытания идентификации дают отрицательный результат.

# В качестве альтернативного испытания допускается определение бактерий семейства Salmonella как указано ниже.

1 мл обогащенной культуры на среде №3 вносят в пробирку с 10 мл среды №12 (селенитовая среда) и инкубируют при температуре 30—35° в течение 16— С 18 ч. Делают пересев петлей на среду №5 (висмут-сульфит агар) и инкубируют при температуре 30—35° в течение 24—48 ч. На среде №5 Salmonella образует, С как правило, типичные черные колонии с характерным металлическим блеском, при этом участок среды под колонией прокрашивается в черный цвет.

Подозрительные на принадлежность к Salmonella колонии микроскопируют и при обнаружении в мазках грамотрицательных палочек отсевают на среду №13 (трехсахарный агар с солями железа), нанося небольшое количество культуры петлей сначала на скошенную часть агара, а потом уколом в столбик.

Параллельно ставят тест на цитохромоксидазу, используя чистую культуру с плотной среды №1. Через 18—24 ч. инкубации при 30—35° отмечают изменение С цвета среды из красного в желтый только в столбике питательной среды.

Почернение среды свидетельствует об образовании сероводорода.

Если в образце обнаружены грамотрицательные неспорообразующие палочки, не обладающие ферментом цитохромоксидаза, не ферментирующие сахарозу и лактозу и выделяющие сероводород, считают, что испытуемый продукт контаминирован Salmonella.# 4-4. PSEUDOMONAS AERUGINOSA 4-4-1. Приготовление образца и предварительное инкубирование.

Готовят образец разведением 1 к 10 не менее чем из 1 г испытуемого продукта как описано в общей статье 2.6.12 и используют 10 мл или количество соответствующее 1 г или 1 мл для инокуляции подходящего количества (определенного как указано в пункте 3-4) бульона на основе гидролизата казеина и соевых бобов, перемешивают. В случае если испытанию подвергаются трансдермальные пластыри, фильтруют через стерильный мембранный фильтр объем образца соответствующий 1 пластырю, обработанному как указано в разделе 4-5-1 общей статьи 2.6.12 и переносят фильтр в 100 мл бульона на основе гидролизата казеина и соевых бобов. Инкубируют при температуре 30— 35° в течение 18—24 ч.

С 4-4-2. Селекция и пересев. Пересевают на чашки с агаризованной средой на основе цетримида и инкубируют при температуре 30—35° в течение 18—72 ч.

С 4-4-3. Интерпретация результатов. На возможное присутствие P. aeruginosa указывает рост колоний. Результат подтверждается идентификационными испытаниями.

Продукт выдерживает испытание, если подобные колонии не обнаруживаются или испытания идентификации дают отрицательный результат.

# В качестве альтернативного испытания допускается определение Pseudomonas aeruginosa как указано ниже.

Образец в количестве 10 г (мл) вносят в 100 мл питательной среды №8, перемешивают и инкубируют при температуре 30—35° в течение 24—48 ч.

С Делают пересев на чашку с плотной питательной средой №9 и инкубируют при температуре 30—35° в течение 18—48 ч. Рост зеленоватых, как правило, С Общая фармакопейная статья 2.6.13. Микробиологические испытания нестерильной продукции: испытания на наличие специфических микроорганизмов флюоресцирующих колоний, голубых в ультрафиолетовом свете (что свидетельствует о наличии пигмента пиоцианина) указывает на возможность загрязнения лекарственного средства Pseudomonas aeruginosa. В этом случае подозрительные колонии пересевают на скошенную плотную среду №1, инкубируют при температуре 30—35° в течение 18—24 ч. Выросшие колонии С микроскопируют и, при выявлении грамотрицательных палочек, проводят тест на наличие фермента цитохромоксидаза. Если в образце обнаружены грамотрицательные неспорообразующие палочки, которые дают положительную оксидазную реакцию и образуют сине-зеленый пигмент, испытуемый продукт контаминирован Pseudomonas aeruginosa.# 4-5. STAPHYLOCOCCUS AUREUS 4-5-1. Приготовление образцов и предварительное инкубирование.

Готовят образец, разведением 1 к 10 не менее чем из 1 г испытуемого продукта как описано в общей статье 2.6.12 и используют 10 мл или количество соответствующее 1 г или 1 мл для инокуляции подходящего количества (определенного как указано в пункте 3-4) бульона на основе гидролизата казеина и соевых бобов, перемешивают. В случае, если испытанию подвергаются трансдермальные пластыри, фильтруют через стерильный мембранный фильтр объем образца соответствующий 1 пластырю, обработанному как указано в разделе 4-5-1 общей статьи 2.6.12 и переносят фильтр в 100 мл бульона на основе гидролизата казеина и соевых бобов. Инкубируют при температуре 30— 35° в течение 18—24 ч.

С 4-5-2. Селекция и пересев. Пересевают на чашки с агаризованной средой на основе маннита и соли и инкубируют при температуре 30—35° в течение 18— С 72 ч.

4-5-3. Интерпретация результатов. На возможное присутствие S. aureus указывает рост желтых/белых колоний, окруженных желтыми зонами. Результат подтверждается идентификационными испытаниями.

Продукт выдерживает испытание, если подобные колонии не обнаруживаются или испытания идентификации дают отрицательный результат.

# В качестве альтернативного испытания допускается определение Staphylococcus aureus как указано ниже.

Образец в количестве 10 г (мл) вносят в 100 мл питательной среды №8, перемешивают и инкубируют при температуре 30—35° в течение 24—48 ч.

С Делают пересев на чашку с плотной питательной средой №10 и инкубируют при температуре 30—35° в течение 18—48 ч. Рост золотисто-желтых колоний, С окруженных желтыми зонами (что свидетельствует о ферментации маннита), указывает на возможность загрязнения лекарственного средства Staphylococcus aureus. В этом случае колонии пересевают на скошенную плотную среду №1, инкубируют при температуре 30—35° в течение 18—24 ч. Выросшие колонии С микроскопируют и, при выявлении грамоположительных кокков, расположенных гроздьями, проводят тест на наличие фермента плазмокоагулаза.

Тест на наличие плазмокоагулазы (реакция плазмокоагуляции).

Используют сухую кроличью цитратную плазму промышленного производства, в соответствии с инструкцией по ее применению.

Если в образце обнаружены грамположительные кокки, которые ферментируют маннит и дают положительную реакцию плазмокоагуляции, испытуемый продукт контаминирован Staphylococcus aureus.# Общая фармакопейная статья 2.6.13. Микробиологические испытания нестерильной продукции: испытания на наличие специфических микроорганизмов 4-6. CLOSTRIDIA 4-6-1. Приготовление образцов и тепловая обработка. Готовят образец разведением 1 к 10 (минимальный общий объем 20 мл) не менее чем из 2 г или 2 мл испытуемого продукта, как описано в общей статье 2.6.12. Делят образец на две части, каждая из которых не менее 10 мл. Нагревают одну порцию при температуре 80° в течение 10 мин и быстро охлаждают. Вторую порцию не С нагревают.

4-6-2. Селекция и пересев. Используют 10 мл или количество соответствующее 1 г или 1 мл испытуемого продукта из обеих порций образца для инокуляции подходящего количества (определенного как указано в 3-4) обогащенной среды для клостридий. Инкубируют в анаэробных условиях при температуре 30—35° в течение 48 ч. После инкубации делают пересев из С каждого контейнера на колумбийский агар и инкубируют в анаэробных условиях при температуре 30—35° в течение 48—72 ч.

С 4-6-3. Интерпретация результатов. Анаэробный рост палочек (с эндоспорами и без них), дающих отрицательную реакцию на каталазу свидетельствует о присутствии клостридий. Результат подтверждается идентификационными испытаниями.

Продукт выдерживает испытание, если подобные колонии не обнаруживаются или испытания идентификации дают отрицательный результат.

4-7. CANDIDA ALBICANS 4-7-1. Приготовление образцов и предварительное инкубирование.

Готовят образец разведением 1 к 10 не менее чем из 1 г испытуемого продукта как описано в общей статье 2.6.12 и используют 10 мл или количество соответствующее 1 г или 1 мл для инокуляции 100 мл декстрозного бульона Сабуро, перемешивают. Инкубируют при температуре 30—35° в течение 3—5 С дней.

4-5-2. Селекция и пересев. Пересевают на чашки с декстрозным агаром Сабуро и инкубируют при температуре 30—35° в течение 24—48 ч.

С 4-7-3. Интерпретация результатов. Рост белых колоний может свидетельствовать о присутствии C. albicans. Результат подтверждается идентификационными испытаниями.

Продукт выдерживает испытание, если подобные колонии не обнаруживаются или испытания идентификации дают отрицательный результат.

Следующий раздел приведен в качестве информационного.

5. РЕКОМЕНДУЕМЫЕ РАСТВОРЫ И ПИТАТЕЛЬНЫЕ СРЕДЫ

Нижеописанные растворы и питательные среды удовлетворяют целям, для которых они предназначены в фармакопейном испытании на микробную контаминацию. Могут быть использованы и другие среды при условии, что их пригодность может быть доказана.

Основной буферный раствор. 34 г калия дигидрофосфата помещают в мерную колбу вместимостью 1000 мл, растворяют в 500 мл очищенной воды, доводят значение рН раствора до 7,2±0,2 натрия гидроксидом, доводят водой Общая фармакопейная статья 2.6.13. Микробиологические испытания нестерильной продукции: испытания на наличие специфических микроорганизмов очищенной до объема 1000,0 мл и перемешивают. Разливают в контейнеры и стерилизуют. Хранят при температуре 2—8° С.

Фосфатный буферный раствор рН 7,2. Смешивают основной буферный раствор и очищенную воду (1:800, об/об) и стерилизуют.

–  –  –

Общая фармакопейная статья 2.6.13. Микробиологические испытания нестерильной продукции: испытания на наличие специфических микроорганизмов после стерилизации оно составляло 7,3±0,2 при 25° Стерилизуют в автоклаве в С.

соответствии с валидированной процедурой. Охлаждают до температуры 45— 50° и, при необходимости, прибавляют гентамицина сульфат в количестве, С, соответствующем 20 мг основания гентамицина; разливают по чашкам Петри.

# Кроме описанных выше сред в некоторых испытаниях могут использоваться следующие альтернативные питательные среды и реактивы:

–  –  –

Компоненты растворяют в воде очищенной при нагревании, фильтруют через бумажный фильтр. Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение 15 мин.

С

–  –  –

Раствор стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121°С в течение 15 мин.

Если нейтрализующая способность раствора недостаточна, концентрация полисорбата 80 или лецитина может быть увеличена. Кроме того, могут быть добавлены нейтрализаторы, перечисленные в статье 2.6.12 в таблице 2.6.12.-2.

–  –  –

Все компоненты растворяют в мясной воде при нагревании, вносят глюкозу моногидрат, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 7,3±0,2. Кипятят в течение 1 мин, прибавляют агар, нагревают до полного его расплавления, фильтруют через ватно-марлевый фильтр.

Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение 15 мин.

С К мясной воде прибавляют пептон и натрия хлорид, растворяют при нагревании, вносят глюкозу моногидрат, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 7,3±0,2. Кипятят в течение 1 мин, фильтруют через бумажный фильтр. Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение 15 мин.

С

–  –  –

Все компоненты растворяют в воде очищенной при нагревании, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 5,6±0,2.

Прибавляют агар, нагревают до полного его расплавления, фильтруют через ватно-марлевый фильтр. Для подавления роста бактерий после стерилизации прибавляют 100 мг бензилпенициллина натрия и 100 мг тетрациклина (либо перед стерилизацией — 50 мг хлорамфеникола) на 100 мл среды. Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение 15 мин.

С

–  –  –

Все компоненты растворяют в воде очищенной при нагревании, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 5,6±0,2.

Фильтруют через бумажный фильтр. Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение 15 мин.

С

–  –  –

Пептон и соли растворяют в мясной воде при нагревании, вносят глюкозу моногидрат, прибавляют 8 мл 1% раствора фенолового красного и 3 мл 0,5% раствора малахитового зеленого, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 7,3±0,2. Кипятят в течение 1 мин, фильтруют Общая фармакопейная статья 2.6.13. Микробиологические испытания нестерильной продукции: испытания на наличие специфических микроорганизмов через бумажный фильтр. Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение 15 мин.

С

–  –  –

Все компоненты размешивают в воде очищенной, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 7,4±0,2. Нагревают до полного расплавления агара и кипятят в течение 2—3 мин. Фильтруют через ватно-марлевый фильтр, снова нагревают до момента закипания. Охлаждают до температуры от 45° до 50° и разливают в чашки Петри.

С С

–  –  –

Все компоненты размешивают в воде очищенной, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 7,6±0,2. Нагревают до полного расплавления агара и кипятят в течение 3—5 мин. Охлаждают до температуры от 45° до 50° и разливают в чашки Петри.

С С

–  –  –

Пептон и натрия хлорид растворяют в мясной воде при нагревании, вносят глюкозу моногидрат, прибавляют 8 мл 1% раствора фенолового красного, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 7,2±0,2. Кипятят в течение 1 мин, фильтруют через бумажный фильтр и разливают в пробирки с поплавками по 4—5 мл. Стерилизуют в паровом Все компоненты растворяют в воде очищенной при нагревании, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 7,2±0,2.

Кипятят в течение 1 мин, фильтруют через бумажный фильтр, разливают в пробирки по 4—5 мл. Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение 15 мин.

С

–  –  –

Пептон и соли растворяют в воде при нагревании, вносят глюкозу моногидрат, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 7,3±0,2. Кипятят в течение 1 мин, фильтруют через бумажный фильтр.

Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение 15 мин.

С

–  –  –

Пептон и соли растворяют в воде очищенной. Затем вносят глицерин, растворяют при нагревании, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 7,2±0,2. Кипятят в течение 1 мин, прибавляют агар, нагревают до полного его расплавления, фильтруют через ватно-марлевый фильтр. Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение С 15 мин.

–  –  –

Общая фармакопейная статья 2.6.13. Микробиологические испытания нестерильной продукции: испытания на наличие специфических микроорганизмов Все компоненты растворяют в воде очищенной, прибавляют 2,5 мл 1% раствора фенолового красного, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 7,4±0,2. Кипятят в течение 1 мин, прибавляют агар, нагревают до полного его расплавления, фильтруют через ватно-марлевый фильтр. Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение С 15 мин.

–  –  –

Все компоненты растворяют в воде очищенной при нагревании, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 6,9±0,1.

Фильтруют через бумажный фильтр. Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение 15 мин.

С

–  –  –

Все компоненты тщательно размешивают в 1000 мл воды очищенной.

Колбу закрывают ватной пробкой, быстро доводят до кипения (до образования пузырьков) и сразу прекращают нагрев. Значение рН после стерилизации 7,5±0,2.

–  –  –

Все компоненты растворяют в воде очищенной при нагревании, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 7,3±0,2.

Фильтруют через ватно-марлевый фильтр. Среду разливают в пробирки по 7 мл.

Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение 15 мин.

С При охлаждении скашивают, оставляя столбик высотой 2,5—3,0 см.

Соли растворяют в воде очищенной, вносят агар и нагревают до полного его расплавления, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 7,2±0,1. Фильтруют через ватно-марлевый фильтр, прибавляют 40 мл 0,2% водного раствора бромтимолового синего. Среду разливают в пробирку по 5—7 мл. Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение 15 мин. При охлаждении скашивают, оставляя С столбик высотой 2,0—2,5 см.

–  –  –

Гидролизат Хоттингера разводят водой до содержания в среде 1200— 1400 мг/л аминного азота, прибавляют соли, значение рН доводят таким образом, чтобы после стерилизации оно составляло 7,5±0,1. Кипятят в течение 15 мин, фильтруют через бумажный фильтр. Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение 15 мин.

С 0,9% раствор натрия хлорида 9,0 г натрия хлорида Р растворяют в 1000,0 мл воды очищенной Р. Раствор фильтруют через бумажный фильтр. Стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение 15 мин.

С

–  –  –

Растворы №1 и №2 стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 121° в течение 15 мин.

С 0,5% раствор малахитового зеленого 0,5 г малахитового зеленого Р растворяют в горячей стерильной воде очищенной Р и доводят до объема 100,0 мл этим же растворителем. Раствор выдерживают в термостате в течение 1 сут, периодически перемешивая.

Реактив Грисса Раствор №1: 0,5 г кислоты сульфаниловой Р растворяют в 30 мл кислоты уксусной ледяной Р, прибавляют 100 мл воды очищенной Р, фильтруют.

Раствор №2: 0,1 г нафтиламина Р растворяют в 100 мл кипящей воды очищенной Р, охлаждают, прибавляют 30 мл кислоты уксусной ледяной Р, фильтруют.

Перед употреблением смешивают равные объемы растворов №1 и №2.

Реактив на цитохромоксидазу Раствор №1: 1% раствор -нафтола Р в 96% спирте Р.

Раствор №2: 1% раствор N,N-диметил-п-фенилендиамина дигидрохлорида.

Перед употреблением смешивают раствор № 1 и № 2 в соотношении 2:3.

–  –  –

Реактив Эрлиха 1,0 г п-диметиламинобензальдегида Р растворяют в 95 мл 96% спирта Р и медленно прибавляют 20 мл кислоты хлористоводородной Р.# Общая фармакопейная статья




Похожие работы:

«РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ Московский государственный университет имени М.В.Ломоносова Факультет почвоведения УТВЕРЖДАЮ Программа учебной практики Учение об атмосфере Направление подготовки №022000 Экология и природопользование Профиль подготовки...»

«2 ЛИСТ СОГЛАСОВАНИЯ от 15.07.2016 Рег. номер: 2068-1 (15.07.2016) Дисциплина: Хроматографические методы исследования 04.04.01 Химия: Химия нефти и экологическая безопасность/2 года ОФО;Учебный план: 04.04.01 Химия: Химия нефти и экологическая безопасность/...»

«УДК 502.1:55 Антипова О. С. Методические подходы к геоэкологической оценке среды жизнедеятельности населения Белорусский государственный университет, г. Минск e-mail: koluchka11olga@mail.ru Аннотация. Рассмотрены разнообраз...»

«ОПИСАНИЕ BY (11) 5555 РЕСПУБЛИКА БЕЛАРУСЬ (19) ИЗОБРЕТЕНИЯ (13) C1 К ПАТЕНТУ 7 (51) B 24D 3/14 (12) НАЦИОНАЛЬНЫЙ ЦЕНТР ИНТЕЛЛЕКТУАЛЬНОЙ СОБСТВЕННОСТИ МАССА ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ АЛМАЗНОГО АБРАЗИВНОГО (54) ИНСТРУМЕНТА (21) Номер заявки: a 20000307 (72) Авторы: Близнец Михаил Михай...»

«П.Ф. Кононков Два мира – две идеологии. О положении в биологических и сельскохозяйственных науках в России в советский и постсоветский период. сборник статей ООО Луч Москва УДК 001 ББК 40.0 К64 Издано при финансовой поддержке Федерального агентства по печати и...»

«ISSN 0568-5435 РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ НАУК БОТАНИЧЕСКИЙ ИНСТИТУТ им. В. Л. КОМАРОВА ACADEMIA SCIENTIARUM ROSSICA INSTITUTUM BOTANICUM NOMINE V. L. KOMAROVII НОВОСТИ СИСТЕМАТИКИ НИЗШИХ РАСТЕНИЙ ТОМ 46 NOVITATES SYSTEMATICAE PLANTARUM NON VASCULARIUM TOMUS XLVI Ботанический...»

«Селиванова Ксения Алексеевна ЭКОЛОГО-ПРАВОВОЙ МЕХАНИЗМ В АГРАРНОМ СЕКТОРЕ ЭКОНОМИКИ: НАПРАВЛЕНИЯ РЕАЛИЗАЦИИ Специальность: 12.00.06 – Земельное право; природоресурсное право; экологическое право; аграрное право Диссертация на соискание ученой степени кандидата юридических наук Научный руководитель: кандидат...»

«ЛИСТ СОГЛАСОВАНИЯ от 12.07.2016 Рег. номер: 371-1 (09.03.2016) Дисциплина: Органический анализ 04.04.01 Химия: Химия нефти и экологическая безопасность/2 года ОФО;Учебный план: 04.04.01 Химия: Химия нефти и экологическая безопасность/2 года ОФО Вид УМК: Электронно...»

«NV-100 NV-102 Руководство по эксплуатации, версия 1.1 (09.2013) Медиацентр _ Версия документа Дата выпуска Содержание изменений Версия 1.1 20.09.2013 Изменения: 4.3 HD-TV Версия 1.0 03.07.2013 Первая публикация Версия программного обеспечения:...»










 
2017 www.book.lib-i.ru - «Бесплатная электронная библиотека - электронные ресурсы»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.