WWW.BOOK.LIB-I.RU
БЕСПЛАТНАЯ  ИНТЕРНЕТ  БИБЛИОТЕКА - Электронные ресурсы
 
s

«СПИРОХЕТОЗ КУР (МОРФОБИОЛОГИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ И ЛЕЧЕНИЕ) ...»

На правах рукописи

Штумпф Дарья Сергеевна

СПИРОХЕТОЗ КУР

(МОРФОБИОЛОГИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ И ЛЕЧЕНИЕ)

03.02.11 – паразитология

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени

кандидата ветеринарных наук

Ставрополь – 2010

Работа выполнена на кафедре паразитологии

и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГОУ ВПО

«Ставропольский государственный аграрный университет»

Научный руководитель: доктор ветеринарных наук, профессор Луцук Светлана Николаевна

Официальные оппоненты: доктор ветеринарных наук Оробец Владимир Александрович кандидат биологических наук Кошкина Наталья Анатольевна

Ведущая организация: ФГОУ ВПО «Кубанский государственный аграрный университет»

Защита состоится « __ » _____________ 2010 г. в ___ часов на заседании диссертационного совета Д 220.062.02 при ФГОУ ВПО «Ставропольский государственный аграрный университет» по адресу: 355017, г. Ставрополь, пер.

Зоотехнический, 12, тел./факс: 8(8652)28-67-38.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГОУ ВПО «Ставропольский государственный аграрный университет».

Автореферат размещен на официальном сайте ФГОУ ВПО «Ставропольский государственный аграрный университет»: http://www.stgau.ru.

Автореферат разослан «___» ____________ 2010 г.

Ученый секретарь диссертационного совета Ю. В. Дьяченко

1.

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы исследований. В числе многих отраслей животноводства в нашей стране большое место отводится птицеводству. В настоящее время эта отрасль успешно развивается, обеспечивая население продуктами питания.

Залог успеха современного птицеводства в значительной степени зависит от глубоких знаний паразитарных заболеваний птицы. Среди них наибольший экономический ущерб наносит спирохетоз.

Спирохетоз птиц – весьма распространенное заболевание, которое регистрируют во многих странах Европы, Азии, Африки, Америки. Считают, что болезнь является типичной для тропических и субтропических стран, однако довольно часто она появляется на территории государств с умеренным климатом.

Большой вклад в изучение спирохетоза птиц и в разработку мер борьбы с ним в нашей стране внесли М. П. Якунин (1960), Р. Е. Никитина (1965), Н. П. Крылова (1968), В. З. Решетняк (1971), Г. Ф. Денисенко (1973), В. И. Ситьков (1980), М. А. Островский (1998) и др. авторы.

Заболевание известно уже более 100 лет. За это время накопилось много материала, который необходимо систематизировать и обобщить. В современных условиях интенсивного развития птицеводства прежние методы борьбы уже не приносят желаемого результата. Предъявляются новые требования к противоспирохетозным препаратам, а изучение современной ситуации по спирохетозу птиц, определение гематологического, биохимического и иммунного статуса необходимо для разработки научно обоснованных систем мер борьбы с этим заболеванием.

Цель и задачи исследований. Целью нашей работы являлось изучение распространения спирохетоза птиц в Ставропольском крае, некоторых вопросов патогенеза, влияния болезни на гематологические, биохимические, иммунобиологические показатели и испытание новых средств.





В задачи исследований входило изучить:

– неблагополучие районов по спирохетозу птиц в Ставропольском крае;

– течение спирохетоза у птиц различного возраста при экспериментальном заражении;

– патоморфологические изменения при спирохетозе у кур;

– динамику изменений гематологических, биохимических и иммунобиологических показателей при экспериментальном спирохетозе;

– эффективность применения окситетрациклина 200 вместе со спиртовым экстрактом из личинок трутней при лечении кур, больных спирохетозом;

– динамику изменений гематологических, биохимических и иммунобиологических показателей при лечении кур, больных спирохетозом.

Научная новизна. Установлены неблагополучные районы по спирохетозу птиц в Ставропольском крае. Изучено течение спирохетоза кур в возрастном аспекте в зависимости от дозы заражения. Впервые изучены иммунобиологические показатели и определены изменения, происходящие в белковой картине крови. Определены патоморфологические изменения в месте инъекции при экспериментальном спирохетозе. Установлена терапевтическая эффективность окситетрациклина 200 методом группового выпаивания и отмечен положительный результат при использовании данного препарата совместно со спиртовым экстрактом из личинок трутней. Изучена динамика гематологических, биохимических и иммунобиологических показателей при лечении кур, больных спирохетозом.

Практическая значимость. Данные, полученные при изучении эффективности средств борьбы и профилактических мероприятий при спирохетозе кур, послужили основой для разработки рекомендаций «Биология, диагностика, лечение и профилактика спирохетоза птиц», утвержденных НТС министерства сельского хозяйства Ставропольского края от 26.03.2010.

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены и обсуждены на научных конференциях СтГАУ 2008–2010 гг.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 7 научных работ, в том числе 2 в изданиях из перечня ведущих рецензируемых научных журналов, утвержденных ВАК Министерства образования и науки РФ.

Объем и структура работы. Диссертация изложена на 125 страницах машинописного текста и включает введение, обзор литературы, материалы и методы исследований, результаты собственных исследований, обсуждение результатов, выводы и предложения, список литературы. Работа иллюстрирована 33 таблицами и 24 рисунками. Список литературы включает 112 источников, в том числе 15 иностранных авторов.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Данные по проведению вакцинаций против спирохетоза птиц за 2007– 2009 гг., свидетельствующие о наличии неблагополучных по данному заболеванию районов в Ставропольском крае.

2. Клинико-морфологические проявления спирохетоза у кур обусловлены воздействием возбудителя и эндогенной интоксикацией.

3. Динамика параметров гематологических, биохимических и иммунологических показателей позволяет указывать и прогнозировать развитие тяжелых клинических форм при спирохетозе у кур.

4. Использование окситетрациклина 200 (в дозе 0,1 мл/кг) совместно со спиртовым экстрактом из личинок трутней пчел (в дозе 1 мл/кг) в течение 10 дней эффективно при спирохетозе кур и способствует восстановлению гематологических, биохимических и иммунобиологических показателей крови.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Материалы и методы исследований Работа выполнена в 2007–2010 гг. на кафедре паразитологии и ветеринарносанитарной экспертизы ФГОУ ВПО «Ставропольский государственный аграрный университет».

Объектом исследования служили куры русской белой породы в возрасте 12 месяцев и куры породы родонит в возрасте 6 и 12 месяцев. В опытах было использовано 175 птиц.

Для проведения исследований подопытные и контрольные группы отбирали по принципу аналогов по 10–15 птиц, одинаковых по возрасту и живой массе. Во время постановки опытов контрольные и подопытные куры содержались изолированно до конца наблюдения.

Изучение неблагополучия районов по спирохетозу птиц проводили на основании данных Ставропольской краевой станции по борьбе с болезнями животных, где нами учитывалось количество вакцинированных птиц из общего поголовья по каждому району Ставропольского края.

Для изучения клинико-морфологического проявления спирохетоза кур подопытной и контрольной групп заражали цитратной кровью в дозе 0,5 мл/гол., с содержанием в ней не менее 50 спирохет в поле зрения микроскопа при исследовании мазков крови.

Клиническое обследование кур при искусственном заражении проводили по общепринятой методике. Отмечали общее состояние, осматривали видимые слизистые оболочки, наблюдали за состоянием опорно-двигательного аппарата, а также измеряли температуру тела и исследовали кровь на наличие спирохет.

Для изучения динамики гематологических, биохимических и иммунобиологических показателей у кур при спирохетозе отбирали кровь из подкрыльцовой вены в утренние часы до опыта и после заражения через 24, 48, 72 и 96 часов.

Для лечения кур, больных спирохетозом, применяли бактериостатический антибиотик длительного действия окситетрациклин 200, произведенный фирмой «Invesa» (Испания), и спиртовой экстракт из личинок трутней пчел.

Группы подопытных птиц, дозы, кратность и способы введения описаны в соответствующих разделах.

Лечение кур начинали с развития типичных клинических признаков болезни при одновременном обнаружении в мазках крови спирохет (не менее 50 экз. в поле зрения). На всем этапе лечения отслеживалась динамика гематологических, биохимических и иммунобиологических показателей до начала и через 1, 5 и 10 дней после лечения.

Контроль над количеством спирохет осуществляли путем исследования мазков крови. Для этого надрезали зубец гребешка или мякиш пальца. Полученные мазки окрашивали по методу Бури или Романовского – Гимза. При микроскопии использовали микроскоп «Микромед-5» под иммерсионным объективом х 90, с окуляром х 7.

Количество эритроцитов и лейкоцитов определяли по общепринятой методике с использованием камеры Горяева. Дифференциальный подсчет лейкоцитов проводили в окрашенных мазках крови при помощи микроскопа «Микромед-5». Содержание гемоглобина устанавливали колориметрическим методом (Антонов Б. И., 1991).

Параметры фагоцитарной активности определяли по поглотительной способности нейтрофилов по отношению к полистирольным частицам латекса (D = 1,5 мкм) после совместной их инкубации (Черкесова А. Н., 2005).

Определение общего белка в сыворотке крови животных осуществляли рефрактометрическим методом в рефрактометре RL 140 (Poland). Содержание белковых фракций в сыворотке крови устанавливали нефелометрическим (турбидиметрическим) методом (Антонов Б. И., 1991).

Определение Т-лимфоцитов осуществляли методом спонтанного розеткообразования с 1 % раствором эритроцитов барана, В-лимфоцитов с 10 % раствором эритроцитов мыши (Е-РОК). Кровь от белой беспородной мыши получали декапитацией. У барана кровь дефибринировали и трижды отмывали физиологическим раствором. За розеткообразующую клетку принимали лимфоцит, присоединивший три и более эритроцитов. После подсчета 200 клеток вычисляли абсолютное количество розеток (Е-РОК). Определение соотношения лимфоцитов с хелперной и супрессорной функциями проводили в теофиллиновом тесте (Гембицкий Е. В., 1987).

Определение концентрации циркулирующих иммунных комплексов в сыворотке крови проводили методом преципитации полиэтиленгликолем молекулярной массой 6000 (ПЭГ6000)(Даугалиева Э. Х., Филлипов В. В., 1991).

Патологоанатомическое вскрытие проводили по общепринятой методике. Для гистологического исследования от кур подопытной и контрольной групп отбирали грудную мышцу, печень, селезенку, фабрициеву сумку, тимус, пищевод, кишечник, сердце, почки. Материал фиксировали в 10 % нейтральном формалине с последующим обезвоживанием в спиртах возрастающей концентрации, по стандартной методике заливали в парафин.

Из полученных блоков на санном микротоме МС-2 делали срезы толщиной 5–10 мкм, которые затем окрашивали гематоксилином и эозином. Фотографирование препаратов проводили с помощью цифровой фотокамеры «Sony»

и микрофотонасадки МФН-П.

Статистическую обработку данных проводили с использованием алгоритмов статистического анализа, реализованных в Microsoft Excel 2007, программе Primer of Biostatistics (Version 4.03) методом критерия Стьюдента. Различие считалось статистически достоверным начиная со значения Р0,05.

Цифровой материал представлен в единицах СИ, рекомендованных Всемирной организацией здравоохранения и стандартом СЭВ 1062–78.

–  –  –

С ТС

–  –  –

Т

–  –  –

В процессе исследования было отмечено уменьшение числа эритроцитов через 24 часа после заражения на 42,0 % (Р0,05) по сравнению с контролем.

Через 48 и 72 часа после заражения данный показатель стал ниже контроля на 49,5 и 54,0 % соответственно, достигая 56,0 % через 96 часов (Р0,05).

Содержание гемоглобина в крови снижалось параллельно уменьшению количества эритроцитов. Через 24 часа после заражения уровень гемоглобина достиг 64,2±3,4 г/л, что на 26,6 % меньше, чем в контрольной группе. Через 48 и 72 часа после заражения количество гемоглобина в сравнении с контролем снизилось на 37,6 и 41,0 % соответственно, достигая 48,6±1,1 г/л через 96 часов после заражения, что на 44,5 % меньше аналогичного показателя в контрольной группе (Р0,05).

При подсчете количества лейкоцитов отмечалось увеличение данного показателя в 2,2 раза через сутки после заражения по сравнению с контрольной группой (Р0,05), достигавшее через 96 часов после заражения 98,8±12,8109/л, что в 3 раза выше аналогичного показателя в контрольной группе (Р0,05).

Что касается качественного состава лейкоцитов, то через сутки после заражения содержание псевдоэозинофилов в крови подопытной группы составило 32,0±1,8 %, что на 19,4 % выше аналогичного показателя в сравнении с контрольной группой (Р0,05), моноциты увеличились на 47,2 % (Р0,05) (10,9±1,7 %), а количество лимфоцитов снизилось на 16,6 % (Р0,05) (46,7±1,8 %).

2.2.4. Биохимические показатели сыворотки крови кур при спирохетозе Биохимические показатели изучали на курах породы родонит в возрасте 12 месяцев. Кровь для исследований отбирали у кур подопытной (10 голов) и контрольной (10 голов) групп до опыта и через 24, 48, 72 и 96 часов после заражения (табл. 4).

Таблица 4 Динамика биохимических показателей крови кур подопытной и контрольной групп (M±m), г/л Срок исследований, ч Группа До опыта 24 48 72 96

–  –  –

Бета-глобулин Подопытная 7,5±0,1 6,2±0,3 6,2±0,5 *6,3±0,01 *6,3±0,05 Контрольная 7,1±0,5 7,4±0,3 7,5±0,1 7,6±0,1 7,6±0,1 Гамма-глобулин Подопытная 16,2±0,3 *27,5±6,3 *44,5±1,6 *46,0±0,9 *46,8±0,5 Контрольная 15,7±0,3 15,9±0,5 16,1±0,5 16,1±0,4 16,1±0,4 * Разница достоверна при Р0,05 относительно контроля.

Согласно полученным результатам у кур при спирохетозе в сыворотке крови отмечается гиперпротеинемия (50,4±1,5–61,7±0,4 г/л). Увеличение общего белка свидетельствует о глубоких нарушениях обмена веществ в организме и происходит преимущественно за счет усиленного синтеза глобулинов.

Высокий уровень гамма-глобулинов (27,5±6,3–46,8±0,5 г/л) сопровождался уменьшением фракции альбумина (12,7±3,4–6,1±0,01 г/л), при этом отмечалось снижение альбумин-глобулинового коэффициента.

2.2.5. Иммунобиологические показатели сыворотки крови кур при спирохетозе Для изучения иммунобиологических показателей использовали те же группы кур, что и при биохимических исследованиях.

Патогенное действие спирохет уже через 24 часа после заражения сопровождалось общей реакцией иммунитета, при которой отмечено снижение Т- и В-лимфоцитов (36,7±1,7 и 26,7±1,8 % соответственно),что на 10,9 и 10,1 % ниже такового показателя в контрольной группе. Через 96 часов Т- и В-лимфоциты достигли 28,9±2,1 и 17,8±1,3 % соответственно.

Со стороны субпопуляций Т-лимфоцитов отмечено увеличение клеток хелперов, супрессоров. Количество клеток супрессоров в сыворотке крови подопытной группы через 24 часа после заражения составило 10,3±1,2 %, что на 43,0 % (Р0,05) выше аналогичного показателя в контрольной группе, а содержание клеток хелперов наиболее сильно увеличилось через 72 часа после заражения и составило 36,1±1,8 %, что на 17,9 % (Р0,05) выше контроля.

Уровень нулевых клеток в сыворотке крови подопытной группы через 48 часов после заражения составил 25,9±1,1 %, достигая 26,0±1,2 % через 96 часов, что на 40,0 и 43,0 % выше аналогичного показателя в контрольной группе соответственно (Р0,05).

У кур при спирохетозе происходит значительное увеличение в сыворотке крови циркулирующих иммунных комплексов через 48 часов (9,2±1,0 ед.), достигающее через 96 часов 14,8±1,6 ед. Формирование такого количества иммунных комплексов в кровотоке вызвано патогенным действием спирохет вследствие интоксикации организма птицы продуктами их жизнедеятельности.

Показатель фагоцитарной активности у кур при спирохетозе через 24 часа возрастает на 17,3 % (Р0,05) по сравнению с контролем. Через 48 и 72 часа после заражения этот показатель достиг 44,7±2,9 и 58,2±3,1 %, что на 30,3 и 68,2 % соответственно выше контроля (Р0,05). При исследовании сыворотки крови через 96 часов после заражения фагоцитарная активность составила 62,7±2,6 %, что на 80,1 % (Р0,05) выше такового показателя в контрольной группе.

2.2.6. Патологоанатомические изменения у кур при спирохетозе Для детального исследования патологоморфологических изменений у кур, возникающих после искусственного заражения спирохетозом, нами было заражено 10 клинически здоровых кур породы родонит в возрасте 12 месяцев, которым внутримышечно в область киля вводили кровь от больных спирохетозом птиц в дозе 0,5 мл/гол. В качестве контроля служили куры того же возраста и породы в количестве 10 голов.

Патологоанатомические изменения наблюдались в месте введения и практически во всех органах и тканях.

У павших кур мышцы киля были уменьшены в объеме, межмышечная клетчатка и частично мышцы, особенно вокруг места инъекции, имели желтую окраску и обширные кровоизлияния (рис. 1).

Рис. 1. Мышцы киля кур на 5-й день после введения крови от больных спирохетозом кур У кур, которым вводили кровь от клинически здоровых птиц, мышцы киля были упругой консистенции, имели бледно-розовый цвет, четко выраженное волокнистое строение, в месте инъекции присутствовало незначительное пропитывание кровью (рис. 2).

Рис. 2. Мышцы киля кур на 5-й день после введения крови от здоровых кур У кур, павших от спирохетоза, мышцы, взятые рядом с местом инъекции, при гистологическом исследовании были неоднородные по толщине, одни волокна утолщены, другие – сходны с таковыми у контрольной группы. Некоторые волокна распадались на отдельные части (рис. 3).

Рис. 3. Лизис и распад отдельных мышечных волокон.

Окраска гематоксилином и эозином Х 400 Таким образом, при внутримышечном введении возбудителя спирохетоза у кур в месте введения были обнаружены патологоанатомические изменения, характерные для острого паренхиматозного миозита с преимущественными некротическими и дистрофическими изменениями в мышечных волокнах.

В печени развивались патологоанатомические изменения, характерные для острого паренхиматозного гепатита с белково-жировой дистрофией в гепатоцитах (рис. 4).

Рис. 4. Жировая дистрофия гепатоцитов.

Окраска гематоксилином и эозином Х 500 В селезенке были обнаружены патологоанатомические изменения характерные для гиперплазии.

В фабрициевой сумке обнаружена пролиферация лимфоидных узелков (рис. 5), сосудистая реакция и диффузное изъязвление слизистой оболочки.

Рис. 5. Гиперплазия лимфоидных узелков в подслизистом слое фабрициевой сумки. Окраска гематоксилином и эозином Х 100 В тимусе обнаруживалось уменьшение коркового слоя долек. Соотношение коркового и мозгового вещества большей частью не превышало 1:4.

Корковый слой слабо выражен, толщина его составляла в среднем 5–6 рядов клеток (рис. 6). В мозговом слое большинство долек уменьшено по сравнению со здоровыми курами. Количество эпителиальных телец было снижено и не превышало 4–6 в каждой дольке.

–  –  –

2.2.8. Показатели крови при лечении кур, больных спирохетозом Для изучения влияния окситетрациклина 200 и окситетрациклина 200 в комплексе со спиртовым экстрактом из личинок трутней на организм кур, экспериментально зараженных спирохетозом, была отобрана и исследована кровь от кур тех же четырех подопытных и одной контрольной групп и определены количественные изменения со стороны гематологических (эритроциты, гемоглобин, лейкоциты, базофилы, эозинофилы, псевдоэозинофлы, лимфоциты, моноциты), биохимических (общий белок, альбумины, альфа, бета, гаммаглобулины) и иммунологических (Т- и В-лимфоциты, клетки хелперы, супрессоры, нулевые) показателей до начала и через 1, 5, 10 дней после лечения.

При исследовании крови в первой подопытной группе (окситетрациклин 200 внутримышечно в дозе 0,1 мл/кг) количественные изменения изучаемых показателей наблюдались уже через сутки после применения препарата. Через 5 дней большинство гематологических показателей (эритроциты – 3,3±0,21012/л, базофилы – 2,9±0,5 %, эозинофилы – 7,3±1,0 %, моноциты – 4,4±1,2 %) находилось в пределах нормы, но в крови было отмечено пониженное количество гемоглобина (70,7±4,2 г/л), незначительный лейкоцитоз (68,2±2,2109/л), лимфоцитопения (51,3±1,0 %).

При исследовании сыворотки крови через сутки после лечения наблюдалось увеличение количества альбумина (9,7±0,6 г/л) на 59,0 % (Р0,05) по сравнению с данным показателем в контрольной группе, достигая через 10 дней 13,8±1,0 г/л, что в 2,2 раза выше, чем в подопытной группе до начала лечения.

Количество альфа-глобулинов через сутки после введения препарата составило 5,7±0,8 г/л, что в 2,0 раза превышало аналогичный показатель в контрольной группе (Р0,05). В динамике количества гамма-глобулинов прослеживалось незначительное снижение (28,0 %, Р0,05) по сравнению с аналогичным показателем в контрольной группе. Данный показатель находился в пределах нормы при исследовании крови через 10 дней (28,9±2,0 г/л).

Среди иммунобиологических показателей следует отметить увеличение количества Т- и В-лимфоцитов через сутки после лечения (35,8±1,7 и 23,0±2,2 % соответственно), это на 34,6 и 24,3 % (Р0,05) выше, чем в контрольной группе.

Высокий процент снижения клеток хелперов (17,0 %) и супрессоров (43,0 %) наблюдался через 10 дней по отношению к результатам, полученным до начала лечения. Количество нулевых клеток в сыворотке крови подопытной группы через сутки после лечения составило 21,3±1,1 %, это на 27,3 % (Р0,05) ниже такового показателя в контрольной группе. Через 5 и 10 дней данный показатель снизился на 17,2 и 30,6 % по сравнению с результатом, полученным в подопытной группе до начала лечения соответственно.

По результатам исследования крови кур второй подопытной группы (окситетрациклин 200 в дозе 0,2 мг/кг методом группового выпаивания) следует отметить, что в данной группе наиболее положительные результаты были получены нами через 10 дней. Однако в этот период был отмечен лейкоцитоз (66,4±3,6 %). Через 10 дней после лечения было отмечено низкое количество альбуминов (10,9±1,0 г/л), альфа-глобулинов (5,2±0,8 г/л) на фоне повышенного содержания гамма-глобулинов (33,04±11,6 г/л).

Содержание Т- и В-лимфоцитов в сыворотке крови кур подопытной группы через 10 дней повысилось на 14,1 и 21,7 % по сравнению с показателем, полученным в этой группе до начала лечения. Количество клеток супрессоров в сыворотке крови подопытной группы через 10 дней составило 8,9±1,9 %, что на 18,3 % ниже показателя, полученного в этой группе до начала лечения соответственно. Уровень клеток хелперов в сыворотке крови подопытной группы через 10 дней после лечения снизился до 30,6±2,2 %, что на 2,8 % ниже по сравнению с показателем, полученным в подопытной группе до начала лечения. Количество нулевых клеток снизилось на 30,6 % по сравнению с результатом, полученным в подопытной группе до начала лечения соответственно.

По результатам проведенных исследований крови кур третьей подопытной группы (окситетрациклин 200 в дозе 0,3 мг/кг методом группового выпаивания) отмечался низкий уровень гемоглобина (70,4±2,7 г/л), лейкоцитоз (77,3±2,2109/л), эозинопения (4,5±0,9 %) и повышенное содержание псевдоэозинофилов (33,4±1,9 %). Через 5 дней после лечения данные показатели находились в пределах нормы.

Содержание альбумина в сыворотке крови кур подопытной группы через сутки после лечения равнялось 7,4±0,7 г/л, что на 48 % (Р0,05) превышало аналогичный показатель в контрольной группе, достигая через 10 дней 14,7±1,4 г/л соответственно.

Касаясь количественных изменений глобулинов, следует отметить увеличение альфа- и бета-глобулинов по сравнению с контролем через сутки после лечения (в 2,2 и 2,0 раза соответственно, Р0,05). Количество гамма-глобулинов в сыворотке крови подопытной группы через сутки после лечения равнялось 35,8±2,0, это на 32,3 % (Р0,05) меньше, чем в контрольной группе. Через 5 и 10 дней показатель достиг 27,5±2,1 и 13,8±2,1 %, что на 42,5 и 71,1 % ниже результата, полученного в данной группе до начала лечения.

Среди иммунобиологических показателей отмечали увеличение Т- и В-лимфоцитов через сутки после лечения (34,6±1,3 и 24,8±1,3 % соответственно), что на 30,0 и 34,0 % (Р0,05) превышало аналогичный показатель в контроле. Количество нулевых клеток (21,3±1,8 %) снизилось через сутки после лечения на 27,3 % (Р0,05) относительно контроля, а содержание клеток супрессоров и хелперов (12,8±1,7 и 34,2±2,3 % соответственно) снизилось на 18,5 и 8,3 % (Р0,05) по отношению к показателям в контрольной группе.

По результатам исследования крови кур четвертой подопытной группы (окситетрациклин 200 внутримышечно в дозе 0,1 мл/кг в комплексе со спиртовым экстрактом из личинок трутней) следует отметить, что уже через сутки после лечения большинство гематологических показателей (гемоглобин – 75,8±2,0 г/л, эозинофилы – 6,3±1,0 %, псевдоэозинофилы – 32,4±1,4 %, лимфоциты – 54,8±1,9 %, моноциты – 6,1±1,1 %) находились в пределах нормы. Однако в крови присутствовал лейкоцитоз (71,5±2,1109/л). По истечении пяти дней после лечения данный показатель находился в пределах нормы (53,7±1,6109/л).

Среди биохимических показателей отмечено снижение через сутки после лечения общего белка на 8,4 % относительно контроля (Р0,05). Содержание альбумина в сыворотке крови подопытной группы через сутки после лечения возросло до 11,3±0,9 г/л (Р0,05), достигая через 5 и 10 дней 14,01±1,2 и 16,8±1,1 г/л соответственно. Уровень гамма-глобулинов в сыворотке крови через сутки после лечения достиг 35,9±2,2 г/л, что на 32,1 % ниже, чем в контрольной группе (Р0,05). Через 5 и 10 дней после лечения данный показатель снизился до 15,2±2,7 и 13,08±3,7 г/л, это на 69,4 и 73,7 % меньше показателя, полученного в подопытной группе до начала лечения.

Количество Т- и В-лимфоцитов увеличилось (32,0 и 31,0 % соответственно) через сутки после лечения по отношению к контролю. Количество клеток супрессоров через сутки после лечения составило 13,6±1,8 %, что на 13,4 % меньше, чем в контрольной группе. Через 5 и 10 дней данный показатель снизился на 43,0 и 60,0 % соответственно по сравнению с результатом, полученным нами до начала лечения в подопытной группе. Количество клеток хелперов через сутки после лечения снизилось на 8,8 % в сравнении с контролем (Р0,05). По истечении 5 и 10 дней после лечения количество клеток хелперов в сыворотке крови подопытной группы равнялось 30,8±1,6 и 27,8±1,8 %, что на 9,4 и 18,2 % соответственно ниже результата, полученного в этой группе до начала лечения. Уровень нулевых клеток через сутки после лечения достигал 20,7±1,6 %, что на 29,3 % ниже аналогичного показателя в контрольной группе (Р0,05). Через 5 и 10 дней содержание нулевых клеток в сыворотке крови подопытной группы составило 18,7±1,9 и 16,4±1,9 %, это на 25,2 и 34,4 % ниже результата, полученного в данной группе до начала лечения.

Таким образом, использование окситетрациклина 200 методом группового выпаивания в дозе 0,3 мл/кг, внутримышечного введения в область киля в дозе 0,1 мл/кг и внутримышечного введения в дозе 0,1 мл/кг в комбинации со спиртовым экстрактом из личинок трутней (1,0 мл/кг в течение 10 дней) сопровождается высоким терапевтическим эффектом и улучшением гематологических, биохимических и иммунобиологических показателей.

3. ВЫВОДЫ

1. На территории Ставропольского края Благодарненский, Советский (засушливая зона); Новоалександровский, Красногвардейский, Труновский (зона неустойчивого увлажнения); Левокумский, Арзгирский, Туркменский (крайне засушливая зона), а также Минераловодский (зона достаточного увлажнения) районы являются наиболее неблагополучными по спирохетозу птиц.

2. При экспериментальном заражении кур различных возрастов установлено, что на течение спирохетоза влияет доза заражения, чем выше доза, тем тяжелее заболевание, при этом симптомы болезни ярче выражены у молодняка, чем у взрослой птицы.

3. При внутримышечном заражении кур спирохетозом в месте введения развиваются обширные некротические изменения, а в органах и тканях – патологоморфологические изменения, характерные для септицемии (гиперплазия селезенки, акцидентальная инволюция тимуса, паренхиматозный миокардит, паренхиматозный гепатит, альтеративный тубулонефрит, катаральный гастроэнтерит с гиперплазией лимфоидных узелков).

4. У экспериментально зараженных кур в крови наблюдается анемия, сопровождающаяся достоверным снижением числа эритроцитов (50,0 %) и гемоглобина (37,4 %). Уровень лейкоцитов повышается в два раза, а в лейкоцитарной формуле присутствует псевдоэозинофилия, эозинопения, лимфоцитопения и выраженный моноцитоз.

5. При спирохетозе в сыворотке крови кур отмечается гиперпротеинемия (50,4±1,5–61,7±0,4 г/л). Увеличение общего белка свидетельствует о глубоких нарушениях обмена веществ в организме, преимущественно за счет усиленного синтеза глобулинов. Высокий уровень гамма-глобулинов (27,5±6,3-46,8±0,5 г/л) сопровождался уменьшением фракции альбумина (12,7±3,4-6,1±0,01 г/л), в результате чего снижался альбумин-глобулиновый коэффициент.

6. Патогенное действие спирохет сопровождается общей реакцией иммунитета, при которой отмечено снижение Т- и В-лимфоцитов (36,7±1,7– 28,9±2,1 % и 26,7±1,8–17,8±1,3 % соответственно). Со стороны субпопуляций Т-лимфоцитов происходит увеличение хелперов (29,8±1,6–38,5±1,5 %), супрессоров (10,3±1,2–17,5±1,5 %). Содержание нулевых клеток также возрастает (21,3±2,4–26,0±1,2 %). При спирохетозе у кур отмечено значительное увеличение в сыворотке крови циркулирующих иммунных комплексов (6,3±0,5– 14,8±1,6 ед.). У экспериментально зараженных кур отмечено достоверное увеличение показателей фагоцитарной активности (44,2±2,2–62,7±2,6 %).

7. Окситетрациклин 200 при лечении кур, экспериментально зараженных возбудителем спирохетоза, обладает терапевтической эффективностью: методом группового выпаивания в дозе 0,3 мл/кг (однократно); однократного внутримышечного введения в область киля в дозе 0,1 мл/кг и внутримышечного однократного введения в дозе 0,1 мл/кг в комбинации со спиртовым экстрактом из личинок трутней (1,0 мл/кг в течение 10 дней).

8. В крови кур, экспериментально зараженных спирохетозом, происходит значительное увеличение гематологических, биохимических и иммунобиологических показателей с использованием окситетрациклина 200 методом группового выпаивания в дозе 0,3 мл/кг (однократно); однократного внутримышечного введения в область киля в дозе 0,1 мл/кг и внутримышечного однократного введения в дозе 0,1 мл/кг в комбинации со спиртовым экстрактом из личинок трутней (1,0 мл/кг в течение 10 дней).

4. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Материалы по лечению кур при спирохетозе вошли в рекомендации «Биология, диагностика, лечение и профилактика спирохетоза птиц» для практикующих ветеринарных врачей, утвержденные НТС министерства сельского хозяйства Ставропольского края 26.03.2010.

2. Для лечения кур, больных спирохетозом, рекомендуем применять окситетрациклин 200 внутримышечно в дозе 0,1 мл/кг (однократно); методом однократного внутримышечного введения в дозе 0,1 мл/кг совместно со спиртовым экстрактом из личинок трутней (1,0 мл/кг в течение 10 дней), а также однократного группового выпаивания данного препарата в дозе 0,3 мл/кг.

3. Основные положения диссертации могут быть использованы в качестве учебного материала по паразитологии и ветеринарно-санитарной экспертизе.

5. СПИСОК РАБОТ,

ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Луцук, С. Н. Распространение спирохетоза птиц / С. Н. Луцук, Д. С. Штумпф // Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных : материалы 72-й науч. конф. (Ставрополь, 22–24 апреля 2008 г.) / СтГАУ. – Ставрополь : АГРУС, 2008. – С. 74–76.

2. Луцук, С. Н. Спирохетоз кур при экспериментальном заражении / С. Н. Луцук, Д. С. Штумпф // Паразитарные, инфекционные и неинфекционные заболевания животных : материалы Междунар. науч.-практ.

Интернет-конф. (Ставрополь, 1–15 декабря 2008 г.) / СтГАУ. – Ставрополь : АГРУС, 2009. – С. 61–64.

3. Луцук, С. Н. Течение спирохетоза кур при экспериментальном заражении / С. Н. Луцук, Д. С. Штумпф // Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных : материалы 73-й науч. конф. (Ставрополь, 23–25 февраля 2009 г.) / СтГАУ. – Ставрополь :

АГРУС, 2009. – С. 54–56.

4. Луцук, С. Н. Биохимические показатели крови при спирохетозе кур / С. Н. Луцук, Д. С. Штумпф // Российский паразитологический журнал. – М., 2009. – № 4. – С. 83–85.

5. Луцук, С. Н. Морфофункциональное состояние печени кур при спирохетозе / С. Н. Луцук, Д. С. Штумпф // Современные методы диагностики, профилактики и терапии заразных и незаразных болезней животных : материалы Междунар. науч.-практ. конф. (Ставрополь, 18–20 ноября 2009 г.) / СтГАУ. – Ставрополь : АГРУС, 2009. – С. 64–66.

6. Луцук, С. Н. Динамика гематологических показателей кур при спирохетозе и после лечения окситетрациклином / С. Н. Луцук, Д. С. Штумпф // Российский паразитологический журнал. – М., 2010. – № 2. – С. 78–79.

7. Луцук, С. Н. Биология, диагностика, лечение и профилактика спирохетоза птиц : метод. рекомендации / С. Н. Луцук, Д. С. Штумпф. – Ставрополь, 2010. – 19 с.

Подписано в печать 29.10.2010. Формат 60х84 1/16.

Гарнитура «Таймс». Бумага офсетная. Печать офсетная. Усл. печ. л. 1,0.

Тираж 100. Заказ № 464.

Отпечатано в типографии издательско-полиграфического комплекса СтГАУ «АГРУС», г. Ставрополь, ул. Мира, 302.




Похожие работы:

«Общественно политическая газета Областная Иркутск, 03.03.2010 Общество http://ogirk.ru/news/2010-03-03/botsad.html Оазис науки, образования и отдыха Разработан эскиз общегородского Иркутского ботанического сада Разговор о том, что Бот...»

«Тренинг нарушенных функций мышц миографическим методом биологической обратной связи (БОС по ЭМГ) Методическое руководство к портативному носимому прибору для контроля инъекций, проведения сеансов БОС...»

«ОТВЕТЫ к заданиям 1 и 2 части Часть 1 Вариант/ Вариант № 1 Вариант № 2 Вариант № 3 Вариант № 4 задания экологические цель Социальный Обыденное(житейское) контроль Нормы оценивания Задания 1-2 оцениваются 1 баллом. Задание считается выполненным верно, если ответ,за...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФГБОУ ВПО "УРАЛЬСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ ЛЕСОТЕХНИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ" Уральское отделение секции наук о лесе РАЕН ФГБУ науки "Ботанический сад УрО РАН" Уральский лесно...»

«УДК 502.34:352 © А.С. Демиденко, Л.В. Доценко, C.З. Полищук РАЗРАБОТКА МАТЕМАТИЧЕСКОЙ МОДЕЛИ ОЦЕНКИ РИСКА ПРЕВЫШЕНИЯ СРЕДНЕСУТОЧНЫХ ПРЕДЕЛЬНО ДОПУСТИМЫХ КОНЦЕНТРАЦИЙ В СИСТЕМЕ ЭКОЛОГИЧЕСКОГО МОНИТОРИНГА ГОРОДА Разработана ст...»

«ИСКУССТВЕННЫЕ ПЛЯЖИ ОСТРОВА НОРДЕРНЕЙ И МОНИТОРИНГ ИХ СОСТОЯНИЯ И.С. Подымов, Т.М. Подымова Южное отделение Института океанологии им. П.П. Ширшова РАН, г. Геленджик. podymov@coastdyn.ru, tpodymova@inbox.ru В современных условиях экологическое равновесие природных экосистем все чаще достигает критических с...»

«Российская Федерация Управление образования Администрации Дмитровского муниципального района Московской области Муниципальное общеобразовательное учреждение РЫБНЕНСКАЯ СРЕДНЯЯ ОБЩЕОБРАЗОВАТЕЛЬНАЯ ШКОЛА 141821, п/о Рыбное, д.26 т/ф 8(496) -2262-366 Дмитровский р-он 8(496) -2262-388 Московская область rybnoе-sc...»

«УСТИНОВА АЛИСА СЕРГЕЕВНА РАЗРАБОТКА ТЕХНОЛОГИИ СБРАЖИВАНИЯ ВЫСОКОКОНЦЕНТРИРОВАННОГО СУСЛА ИЗ ЯЧМЕНЯ Специальность 05.18.07 – Биотехнология пищевых продуктов и биологических активных веществ АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени канди...»

«ОСИПОВИЧСКИЙ РАЙИСПОЛКОМ ОТДЕЛ ИДЕОЛОГИЧЕСКОЙ РАБОТЫ, КУЛЬТУРЫ И ПО ДЕЛАМ МОЛОДЕЖИ МАТЕРИАЛ для информационно-пропагандистских групп "Повышение экологической культуры в белорусском обществе". стр. 2 "Борьба с коррупциейважнейшая государстве...»










 
2017 www.book.lib-i.ru - «Бесплатная электронная библиотека - электронные ресурсы»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.